fbpx
Wikipedia

Streptococcus agalactiae

El Streptococcus agalactiae, estreptococo del grupo B (EGB), Group B Streptococcus, GBS,[1]​ es una bacteria que puede ocasionar infecciones muy graves (infección por estreptococo del grupo B), en recién nacidos y adultos. EGB es un coco (bacteria redonda) gram positivo que al microscopio se dispone en cadenas (estreptococo), beta-hemolítico, catalasa negativo, oxidasa negativo y anaerobio facultativo, caracterizado por presentar en su pared el grupo B de antígenos del sistema de Lancefield. El EGB posee una cápsula bacteriana de polisacárido rica en ácido siálico y según su estructura se distinguen 10 serotipos antigénicamente diferentes (Ia, Ib, II-IX).[1][2][3]​ El EGB es un constituyente de la microbiota (flora intestinal), microbiota normal del intestino de los humanos y otros animales.

 
Streptococcus agalactiae
Taxonomía
Dominio: Bacteria
Filo: Firmicutes
Clase: Bacilli
Orden: Lactobacillales
Familia: Streptococcaceae
Género: Streptococcus
Especie: S. agalactiae
Lehmann and Neumann, 1896

Identificación en el laboratorio

El EGB crece como colonias beta-hemolíticas en agar sangre (rodeadas por un halo pequeño de β-hemólisis) y puede ser identificado [4]​ detectando el antígeno de grupo B por medio de aglutinación con látex con antisueros específicos.[5]

Otros test para identificar EGB son la detección de la hidrólisis del hipurato y la prueba de CAMP,[5]​ que provoca la lisis de eritrocitos bovinos o de cordero previamente sensibilizados por la esfingomielinasa producida por Staphylococcus aureus.[5]

 
Colonias β-hemoliticas de Streptococcus agalactiae en agar sangre después de 18 h de incubación a 36°C
 
Colonias de Streptococcus agalactiae on Granada medium, incubación anaerobia 48h 36°C
 
Granadaene

Las cepas hemolíticas de EGB cuando se cultivan en agar granada (medio granada) [6]​ se desarrollan como colonias rojas pues producen un pigmento poliénico no isoprenoide de color rojo –granadaeno-[7]​ específico del EGB que permite su identificación inmediata.[8]

La identificación del EGB puede también llevarse a cabo usando la técnica de MALDI-TOF (Matrix Assisted Laser Desorption Ionization- Time of Flight Mass Spectrometry).[9][10]

La identificación "tentativa" del EGB también es posible por el aspecto de sus colonias en un medio cromogénico específico donde crece como colonias de color distinto según el medio empleado.[4][11][12]​ Si para la detección e identificación de EGBB se utilizan medios de cultivo cromogénicos siempre debe confirmarse que las colonias sospechosas (con aspecto de EGB) son realmente EGB utilizando una técnica segura de identificación e.g. detección de pigmento, aglutinación con látex, la prueba CAMP o MALDI-TOF.[4][8]

 
CAMP test positivo

Virulencia

EGB puede encontrarse, como comensal, sin producir enfermedad (microbiota normal), en el aparato digestivo, urinario y genital hasta en un 30% de los adultos, (colonización), incluyendo la mujer embarazada.[2][13]​ Sin embargo, en ocasiones, el EGB es capaz de burlar los mecanismos de defensa del huésped humano, invadir los tejidos y causar infecciones graves ((Infección por estreptococo grupo B). Entre los principales factores de virulencia del EGB pueden citarse[14]​ el polisacárido capsular y la beta hemolisina (considerada idéntica al pigmento).[6][15][16][17][18][19]

Colonización e infección en la madre y el recién nacido

Se han publicado tasas de colonización por EGB en la embarazada (sin causar infección) (portadores) entre un 4 y 36%, aunque la mayoría de estudios indican cifras sobre un 20%. Encontrándose grandes variaciones entre países e incluso entre regiones de un mismo país. Esta variación en los datos publicados puede deberse a diferentes métodos de estudio y a diferencias en las poblaciones estudiadas.[13][20]

Aunque la colonización por EGB normalmente no ocasiona síntomas ni problemas a la mujer sana durante el embarazo, puede provocar una enfermedad grave a la madre y al bebé durante la gestación y después del parto[2][21]​, habiéndose relacionado con muerte fetal y parto prematuro.[22]​ La infección por EGB puede causar infrecuentemente corioamnionitis (infección grave de las membranas placentarias) e infección posparto (después del nacimiento). Las infección urinaria por EGB pueden inducir el trabajo de parto y provocar un parto prematuro.[2]​ En los países desarrollados EGB es la causa más frecuente de infección bacteriana grave del recién nacido, septicemia, neumonía y meningitis, pudiendo causar su muerte u originar secuelas permanentes.[2]​ En el recién nacido la infección por EGB causa dos síndromes clínicos diferentes, la infección de comienzo precoz (Early Onset Disease, EOD) y la infección de comienzo tardío (Late Onset Disease, LOD).[2]​ La infección de comienzo precoz se desarrolla en los primeros siete días de vida, la gran mayoría de casos aparecen en las primeras 24 horas de vida casi siempre como sepsis sin foco, neumonía o meningitis. Los recién nacidos pueden contraer la infección intraútero o más frecuentemente al pasar por el tracto genital durante el parto. La transmisión vertical (madre-recién nacido) ocurre durante el parto y aproximadamente un 50% de los recién nacidos de madres colonizadas por EGB están también colonizados. En ausencia de medidas de prevención 1-2% de los recién nacidos de madres colonizadas desarrollan EOD.[23]​ En US la incidencia de la EOD antes de la instauración de medidas de prevención era del 0.7 al 3.7 por mil recién nacidos[2]​y en Europa se han comunicado incidencias desde 0.2 a 3.25 por mil recién nacidos.[20]

Diversos factores favorecen el desarrollo de la infección por EGB de comienzo precoz en un recién nacido cuya madre esta colonizada por EGB.[11][21]​ Aunque el riesgo fundamental para que el recién nacido desarrolle una infección neonatal por EGB es la colonización de la madre[21]​ otros factores de riego incluyen prematuridad, coriamnionitis materna, rotura prolongada de membranas (más de 18 h), fiebre intraparto, un hermano anterior que haya sufrido EOD y la bacteriuria por EGB durante el embarazo[11][21]​. Otro importante factor de riesgo es la exposición a una alta concentración de EGB en el canal del parto. Sin embargo, la mayoría de los recién nacidos que desarrollan EOD nacen de madres que no presentan ninguno de estos factores.[11]​ La mortalidad por EOD que en los años 70 era de un 50% ha declinado actualmente en los países desarrollados a un 4-8%, fundamentalmente por los avances en los cuidados neonatales, siendo más alta entre los recién nacidos prematuros.[11][24]

La infección por EGB de comienzo tardío aparece después de una semana desde el nacimiento hasta los 90 días de vida, presentándose comúnmente como bacteriemia o meningitis sin que en muchos casos pueda conocerse el mecanismo de infección. Cuando LOD cursa como meningitis son frecuentes las secuelas permanentes como retraso mental o sordera.[2][25]

Como evitar la infección neonatal

La única alternativa que, hasta ahora, se ha mostrado eficaz para prevenir la infección neonatal precoz por EGB es administrar por vía intravenosa a la gestante colonizada por EGB un antibiótico adecuado (profilaxis antibiótica) durante un mínimo de 4 horas antes del final del parto. Esta conducta reduce la transmisión del EGB al recién nacido y previene que este desarrolle infección por EGB. Los antibióticos utilizados son penicilina y ampicilina, y en caso de hipersensibilidad (reacción alérgica) cefazolina, clindamicina o vancomicina.[11][21][26][27]

Para seleccionar las madres candidatas a recibir profilaxis antibiótica existen dos estrategias. Una se basa en detectar las portadoras de EGB en la semana 35-37 de embarazo (cribado universal)(pesquisa universal) y suministrar profilaxis antibiótica durante el parto a todas las madres colonizadas por EGB. Adicionalmente se debe administrar profilaxis a las embarazadas que presentan factores de riesgo y cuyo estado de portadora de EGB se desconoce en el momento del parto. La otra estrategia selecciona a las candidatas a recibir profilaxis antibiótica basándose en la sola presencia de los citados factores de riesgo.[11][21][28]

Los Centros para el Control y la Prevención de Enfermedades (en inglés Centers for Disease Control and Prevention, CDC) publicaron sus recomendaciones actualizadas para las prevención de la infección neonatal por EGB en 2010[11]​. En el año 2018 los CDC transfirieron la actualización de sus recomendaciones al colegio americano de obstetras y ginecólogos (American College of Obstetricians and Gynecologists, ACOG), a la Academia Americana de Pediatría y a la Sociedad Americana de Microbiología que en 2019 y 2020 han publicado documentos actualizado de recomendaciones para prevención de la infección neonatal por EGB. [8][21][27]

El documento de la ACOG no introduce novedades importantes sobre las recomendaciones de los CDC. La novedad es la recomendación de efectuar la detección de EGB en la embarazada en la semana 36-37 en vez de 35-37. Esta nueva recomendación, que se ha mostrado más efectiva,[29]​ tiene por objeto hacer válido la detección de EGB hasta cubrir los partos en la semana 41, dada la validez de solo 5 semanas de la pruebas de detección de EGB en la embarazada.[30]

La estrategia de cribado universal se sigue en la mayoría de países occidentales como USA, España, Francia, Bélgica, Canadá, Australia, Argentina etc. La estrategia basada en factores de riesgo es seguida en la UE en UK y Holanda.[20]​ Esta estrategia se muestra menos eficaz pues más de la mitad de los casos de infección precoz se presentan en recién nacidos de embarazadas sin factores de riesgo aparentes.[24]​ Pero desafortunadamente la profilaxis intraparto no es eficaz para prevenir la infección neonatal de comienzo tardío.[20][21]

Desarrollo de una vacuna

La alternativa más eficaz para prevenir la infección por EGB será una vacuna capaz de provocar una adecuada respuesta inmune. Esta vacuna administrada a la madre protegería al recién nacido frente a la infección por EGB de comienzo precoz y también frente a la infección de comienzo tardío, así mismo protegería a los adultos susceptibles. El polisacárido de la cápsula del EGB es un importante factor de virulencia y constituye un excelente candidato para el desarrollo de vacunas para prevenir la infección por EGB.[20][31]​ Actualmente en adición a las vacunas basadas en el polisacárido capsular están en desarrollo y ensayo vacunas basadas en proteínas de superficie del EGB.[31][32]

Pero aunque existen estudios avanzados y ensayos clínicos avanzados, una vacuna efectiva aún no esta disponible para su uso generalizado.[20][33][34][35]

Detección de portadores

Aunque el estado de portadora durante el embarazo puede ser intermitente, se acepta que los cultivos vagino-rectales para detectar la colonización por EGB realizados con menos de 5 semanas antes del parto predicen adecuadamente el estado de portadora de EGB durante el parto, sin embargo, los cultivos realizados con anterioridad a 5 semanas no son fiables.[11][21][36][30]​ Las últimas recomendaciones de la ACOG recomiendan efectuar el cultivo para detección de EGB entre las semanas 36 y 37 de embarazo.[21]​ La muestras a estudiar son muestras vaginales y rectales tomadas con torunda.[11][21]​ Actualmente se recomienda usar escobillones "floked" para la toma de las muestras vaginales y rectales, pues este tipo de escobillones permite una mejor liberación de la muestra al medio de cultivo. [8]​ ​La técnica recomendada por los Centros para el Control y Prevención de Enfermedades de Estados Unidos (Centers for Disease Control and Prevention, CDC)[11]​ y por la Sociedad Americana de Microbiología (American Society for Microbiology. ASM)[8]​ requiere incubar las muestras vaginales y rectales en un caldo de enriquecimiento selectivo (Todd Hewitt con antibióticos) y posterior subcultivo en agar sangre e identificación como EGB de las colonias sospechosas. También es adecuado subcultivar el caldo selectivo en medio Granada donde la aparición de colonias rojas es demostrativa de la presencia de EGB,[4][37][38]​ pueden utilizarse medios de cultivo cromogénicos donde la aparición de colonias de color determinado indica la presencia de EGB.[11]​ Cuando se utilizan medios cromogénicos debe confirmarse que las colonias sospechosas (con aspecto de EGB) son realmente EGB mediante un procedimiento adecuado de confirmación e.g. aglutinación con látex o el test CAMP.[4]

Para detectar EGB en muestras vaginales y rectales también pueden utilizarse directamente -o tras una fase de enriquecimiento por cultivo en caldo selectivo- técnicas moleculares de amplificación de ácidos nucleicos como la reacción en cadena de la polimerasa,(Polymerase chain reaction) PCR.[11]

Las pruebas rápidas para detectar EGB (fundamentalmente técnicas moleculares) pueden ser en el futuro efectivas como substituto del cultivo para detectar las madres portadoras de EGB. Pero estas pruebas deben ser aún mejoradas para su uso como "point-of-care testing, POCT" que pueda ser realizado en la sala de partos y reemplazar a la detección del EGB por cultivo.[11][21]​ Un inconveniente de estas técnicas es que actualmente no permiten conocer la sensibilidad a los antibióticos de la cepa de EGB, lo que es un problema serio si existe alergia a la penicilina.[11][21]

 
Colonias rojas de S.agalactiae en agar Granada. Cultivo vagino-rectal 18h incubación anaerobiosis 36°C

Infección en animales

EGB fue primariamente identificado como un patógeno animal causante principal de mastitis bovina[39]​causando importantes perdidas en la producción de leche y por ello fue nombrado agalactiae (sin leche). La mastitis provocada por EGB puede tener un importante efecto sobre la cantidad y calidad de la leche producida y está asociada con contajes elevados de células y bacterias en la leche.[40]

EGB se ha encontrado también en múltiples especies animales como pollos, camellos, caballos, lagartos, ranas, hámster, gatos, ratones, monos y peces.[41]​ Las infecciones por EGB en peces causan septicemia y hemorragias internas y externas, constituyendo una importante fuente de perdidas en las piscifactorías.[42]

Referencias

  1. Whiley RA, Hardie JM (2009). Genus I. Streptococcus Rosenbach 1884. Bergey's Manual of Systematic Bacteriology: Vol 3: The Firmicutes (2nd edición). pp. 655-711. 
  2. Edwards MS, Nizet V. (2011). Group B streptococcal infections. Infectious Diseases of the Fetus and Newborn Infant (7th edición). Elsevier. pp. 419-469. ISBN 978-0-443-06839-3. 
  3. Slotved HC, Kong F, Lambertsen L, Sauer S, Gilbert GL. (2007). «Serotype IX, a Proposed New Streptococcus agalactiae Serotype.». J Clin Microbiol. 45(9):2929-36. doi:10.1128/JCM.00117-07. Consultado el 17 de noviembre de 2019. 
  4. Rosa-Fraile M.,Spellerberg B. (2017). «Reliable Detection of Group B Streptococcus in the Clinical Laboratory.». Journal of Clinical Microbiology. 55: (9): 2590-2598. PMID 28659318. doi:10.1128/JCM.00582-17. Consultado el 19 de noviembre de 2019. 
  5. Tille P (2014). Bailey & Scott's Diagnostic Microbiology (13th edición). Elsevier Mosby. ISBN 978-0-323-08330-0. 
  6. Rosa-Fraile M, Dramsi S, Spellerberg B. (2014). «Group B streptococcal haemolysin and pigment, a tale of twins.». FEMS Microbiol Rev 38: 932-946. 
  7. Rosa-Fraile M, Rodríguez-Granger J, Haidour-Benamin A, Cuerva JM, Sampedro A. (2006). «Granadaene: proposed structure of the group B Streptococcus polyenic pigment.». Appl Environ Microbiol. 72:6367-70. doi:10.1128/AEM.00756-06. Consultado el 15 Noviembre 2019.. 
  8. Filkins L, Hauser J, Robinson-Dunn B, Tibbetts R, Boyanton B, Revell P (March 10, 2020). «American Society for Microbiology.Guidelines for the Detection and Identification of Group B Streptococcus.» (en inglés). Consultado el 6 March 2021. 
  9. Binghuai L, Yanli S, Shuchen Z, Fengxia Z, Dong L, Yanchao C. (2014). «Use of MALDI-TOF mass spectrometry for rapid identification of group B Streptococcus on chromID Strepto B agar.». Int J Infect Dis. 2014 27:44-8. doi:10.1016/j.ijid.2014.06.023. 
  10. To KN, Cornwell E, Daniel R, Goonesekera S, Jauneikaite E, Chalker V, Le Doare K. (2019). «Evaluation of matrix-assisted laser desorption ionisation time-of-flight mass spectrometry (MALDI-TOF MS) for the Identification of Group B Streptococcus.». BMC Res Notes. 2019:12:85. doi:10.1186/s13104-019-4119-1. Consultado el 17 de noviembre de 2019. 
  11. Verani JR, McGee L, Schrag SJ (2010). «Prevention of perinatal group B streptococcal disease: revised guidelines from CDC, 2010». MMWR Recomm Rep. 59(RR-10): 1-32. 
  12. El Aila NA, Tency I, Claeys G, Saerens B, Cools P, Verstraelen H, Temmerman M, Verhelst R, Vaneechoutte M (2010). «Comparison of different sampling techniques and of different culture methods for detection of group B streptococcus carriage in pregnant women.». BMC Infect Dis. 2010 -10:285. doi:10.1186/1471-2334-10-285. Consultado el 18 de noviembre de 2019. 
  13. Barcaite E, Bartusevicius A, Tameliene R, KliucinskasM, Maleckiene L, Nadisauskiene R (2014). «Prevalence of maternal group B streptococcal colonisation in European countries». Acta Obstet Gynecol Scand 87: 260-271. 
  14. Rajagopal L. (2009). «Understanding the regulation of Group B Streptococcal virulence factors.». Future Microbiol. 4: 201-221. 
  15. Whidbey C, Harrell MI, Burnside K, Ngo L, Becraft AK, Iyer LM, Aravind L, Hitti J, Waldorf KM, Rajagopal L. (2013). «A hemolytic pigment of Group B Streptococcus allows bacterial penetration of human placenta.». J Exp Med 3: 1265-1281. 
  16. Whidbey C, Vornhagen J, Gendrin C, Boldenow E, Samson JM, Doering K, Ngo L, Ezekwe EA Jr, Gundlach JH, Elovitz MA, Liggitt D, Duncan JA, Adams Waldorf KM, Rajagopal L. (2015). «A streptococcal lipid toxin induces membrane permeabilization and pyroptosis leading to fetal injury.». EMBO Mol Med. 7: 488-505. 
  17. Leclercq SY, Sullivan MJ, Ipe DS, Smith JP, Cripps AW, Ulett GC. (2016 Jul 7;6:29000). «Pathogenesis of Streptococcus urinary tract infection depends on bacterial strain and β-hemolysin/cytolysin that mediates cytotoxicity, cytokine synthesis, inflammation and virulence». Sci Rep 2016. Jul 7;6:29000. doi:10.1038/srep29000. 
  18. Armistead B, Oler E, Adams Waldorf K, Rajagopal (2019). «The Double Life of Group B Streptococcus: Asymptomatic Colonizer and Potent Pathogen». J Mol Biol 431: 2914-2931. doi:10.1016/j.jmb.2019.01.035. Consultado el 3 de enero de 2021. 
  19. Blair Armistead, Christopher Whidbey, Lakshminarayan M. Iyer, Pilar Herrero-Foncubierta, Phoenicia Quach, Ali Haidour, L. Aravind, Juan Manuel Cuerva, Heather B. Jaspan, Lakshmi Rajagopal (2020). «The cyl Genes Reveal the Biosynthetic and Evolutionary Origins of the Group B Streptococcus Hemolytic Lipid, Granadaene». Front Microbiol. 10: 3123. doi:10.3389/fmicb.2019.03123. Consultado el 3 de enero de 2021. 
  20. Rodriguez-Granger J, Alvargonzalez JC, Berardi A, Berner R, Kunze M, Hufnagel M, Melin P, Decheva A, Orefici G, Poyart C, Telford J, Efstratiou A, Killian M, Krizova P, Baldassarri L, Spellerberg B, Puertas A, Rosa-Fraile M. «Prevention of group B streptococcal neonatal disease revisited. The DEVANI European project». Eur J Clin Microbiol Infect Dis 31: 2097-2104. 
  21. The American College of Oftetricians and Ginecologists (2019). «Prevention of Group B Streptococcal Early-Onset Disease in Newborns: ACOG Committee Opinion, Number 782.». Obstet Gynecol. 2019 ;134:e19-e40. 10.1097/AOG.0000000000003334. doi:10.1097/AOG.0000000000003334. Consultado el 16 de noviembre de 2019. 
  22. Muller AE, Oostvogel PM, Steegers EA, Dörr PJ. (2006). «Morbidity related to maternal group B streptococcal infections.». Acta Obstet Gynecol Scand. 2006;85:1027-37. doi:10.1080/00016340600780508. Consultado el 16 de noviembre de 2019. 
  23. Boyer KM, Gotoff SP (1985). «Strategies for chemoprophylaxis of GBS early-onset infections.». Antibiot Chemother 35: 267-280. 
  24. Giménez M, Sanfeliu I, Sierra M, Dopico E, Juncosa T, Andreu A, Lite J, Guardià C, Sánchez F, Bosch J (2014). «Evolución de la sepsis neonatal precoz por Streptococcus agalactiae en el área de Barcelona (2004-2010). Análisis de los fallos del cumplimiento del protocolo de prevención». Enferm Infecc Microbiol Clin. 
  25. Libster R, Edwards KM, Levent F, Edwards MS, Rench MA, Castagnini LA, Cooper T, Sparks RC, Baker CJ, Shah PE (2012). «Long-term outcomes of group B streptococcal meningitis.». Pediatrics 130: e8´15. 
  26. Alós Cortés JI, Andreu Domingo A, Arribas Mir L, Cabero Roura L, Cueto Lopez M, López Sastre J, Melchor Marcos JC, Puertas Prieto A, Rosa Fraile M, Salcedo Abizanda S, Sánchez Luna M, Sánchez Pérez MJ, Torrejón Cardoso R. (2012). «Prevención de la infección perinatal por estreptococo del grupo B. Recomendaciones españolas. Actualización 2012». Rev Esp Quimioter. 2012;25:79-88. 25: 79-88. Consultado el 18 de noviembre de 2019. 
  27. Puopolo KM, Lynfield R, Cummings JJ, AAP COMMITTEE ON FETUS AND NEWBORN, AAP COMMITTEE ON INFECTIOUS DISEASES (2019). «Management of Infants at Risk for Group B Streptococcal Disease.». Management of Infants at Risk for Group B Streptococcal Disease. 144: :e20191881. doi:10.1542/peds.2019-1881. Consultado el 3 de enero de 2021. 
  28. Clifford V, Garland SM, Grimwood K (2011). [doi:10.1111/j.1440-1754.2011.02203.x «Prevention of neonatal group B streptococcus disease in the 21st century.»]. J Paediatr Child Health 48: 808-815. 
  29. Williams M, Zantow E, Turrentine M. (2020). «Cost Effectiveness of Latest Recommendations for Group B Streptococci Screening in the United States». Obstet Ginecol. 135: 789-798. doi:10.1097/AOG.0000000000003649. 
  30. Yancey MK, Schuchat A, Brown LK, Ventura VL, Markenson GR. (1996). «The accuracy of late antenatal screening cultures in predicting genital group B streptococcal colonization at delivery.». Obstet Gynecol. 88(5):811-5. doi:10.1016/0029-7844(96)00320-1. 
  31. Song JY, Lim JH, Lim S, Yong Z, Seo HS. (2018). «Progress toward a group B streptococcal vaccine.». Hum Vaccin Immunother. 2018;14(11):2669-2681. doi:10.1080/21645515.2018.1493326. Consultado el 18 Noviembre 2019.. 
  32. Carreras-Abad C, Ramkhelawon L, Heath PT, Le Doare K (2020). «A Vaccine Against Group B Streptococcus: Recent Advances.». Infect Drug Resist. (en inglés) 13: 263-1272. doi:10.2147/IDR.S203454. Consultado el 3 de enero de 2021. 
  33. Baker CJ, Carey VJ, Rench MA, Edwards MS, Hillier SH, Kasper DL, Platt R. (2014). «Maternal Antibody at Delivery Protects Neonates From Early Onset Group B Streptococcal Disease». J Infect Dis 209: 781-788. 
  34. Heath PT. (2016). «Status of vaccine research and development of vaccines for GBS». Vaccine. 34:: 28762879. PMID 26988258. doi:10.1016/j.vaccine.2015.12.072/j.vaccine.2015.12.072. Consultado el 27 de noviembre de 2017. 
  35. Puertas-Prieto A, Lara-Oya A, Liébana Martos C, Rodríguez-Granger J, Cobo F, Sampedro A, Padilla A, Gutiérrez-Fernández J, Manzanares-Galán S, Cueto-López M, Rosa-Fraile M, Navarro-Mari JM. (2017). «Streptococcus agalactiae: prevención y desarrollo de vacunas». Rev Esp Quimioter. 30 (5): 312-318. PMID 28945063. Consultado el 27 de noviembre de 2017. 
  36. Valkenburg-van den Berg AW, Houtman-Roelofsen RL, Oostvogel PM, Dekker FW, Dorr PJ, Sprij AJ. (2010). «Timing of group B streptococcus screening in pregnancy: a systematic review». Gynecol Obstet Invest 69: 174-183. 
  37. Rosa-Fraile M, Rodriguez-Granger J, Cueto-Lopez M, Sampedro A, Biel Gaye E, Haro M & Andreu A. (1999). «Use of Granada medium to detect group B streptococcal colonization in pregnant women». J Clin Microbiol 37: 2674-2677. 
  38. Carey RB. «Group B Streptococci: Chains & Changes New Guidelines for the Prevention of Early-Onset GBS». Consultado el 17 de septiembre de 2015. 
  39. Keefe GP. (1997). «Streptococcus agalactiae mastitis: a review.». Can Vet J 38: 429-437. Consultado el 19 de noviembre de 2019. 
  40. Ruegg PL. (2017). «A 100-Year Review: Mastitis detection, management, and prevention». J Dairy Sci. 2017;100:10381-10397. doi:10.3168/jds.2017-13023. Consultado el 17 Noviembre 2018.. 
  41. Garcia JC, Klesius PH, Evans JJ, Shoemaker CA (2008). «Non-infectivity of cattle Streptococcus agalactiae in Nile tilapia, Oreochromis niloticus and channel catfish, Ictalurus punctatus». Aquaculture. 281: 151-154. 
  42. Evans JJ, Klesius PH, Pasnik DJ, Bohnsack JF (2009). «Human Streptococcus agalactiae isolate in Nile tilapia (Oreochromis niloticus).». Emerg Infect Dis. 15: 774-776. 
  •   Datos: Q132949
  •   Multimedia: Streptococcus agalactiae
  •   Especies: Streptococcus agalactiae

streptococcus, agalactiae, estreptococo, grupo, group, streptococcus, bacteria, puede, ocasionar, infecciones, graves, infección, estreptococo, grupo, recién, nacidos, adultos, coco, bacteria, redonda, gram, positivo, microscopio, dispone, cadenas, estreptococ. El Streptococcus agalactiae estreptococo del grupo B EGB Group B Streptococcus GBS 1 es una bacteria que puede ocasionar infecciones muy graves infeccion por estreptococo del grupo B en recien nacidos y adultos EGB es un coco bacteria redonda gram positivo que al microscopio se dispone en cadenas estreptococo beta hemolitico catalasa negativo oxidasa negativo y anaerobio facultativo caracterizado por presentar en su pared el grupo B de antigenos del sistema de Lancefield El EGB posee una capsula bacteriana de polisacarido rica en acido sialico y segun su estructura se distinguen 10 serotipos antigenicamente diferentes Ia Ib II IX 1 2 3 El EGB es un constituyente de la microbiota flora intestinal microbiota normal del intestino de los humanos y otros animales Streptococcus agalactiaeTaxonomiaDominio BacteriaFilo FirmicutesClase BacilliOrden LactobacillalesFamilia StreptococcaceaeGenero StreptococcusEspecie S agalactiae Lehmann and Neumann 1896 editar datos en Wikidata Indice 1 Identificacion en el laboratorio 2 Virulencia 3 Colonizacion e infeccion en la madre y el recien nacido 4 Como evitar la infeccion neonatal 4 1 Desarrollo de una vacuna 5 Deteccion de portadores 6 Infeccion en animales 7 ReferenciasIdentificacion en el laboratorio EditarEl EGB crece como colonias beta hemoliticas en agar sangre rodeadas por un halo pequeno de b hemolisis y puede ser identificado 4 detectando el antigeno de grupo B por medio de aglutinacion con latex con antisueros especificos 5 Otros test para identificar EGB son la deteccion de la hidrolisis del hipurato y la prueba de CAMP 5 que provoca la lisis de eritrocitos bovinos o de cordero previamente sensibilizados por la esfingomielinasa producida por Staphylococcus aureus 5 Colonias b hemoliticas de Streptococcus agalactiae en agar sangre despues de 18 h de incubacion a 36 C Colonias de Streptococcus agalactiae on Granada medium incubacion anaerobia 48h 36 C Granadaene Las cepas hemoliticas de EGB cuando se cultivan en agar granada medio granada 6 se desarrollan como colonias rojas pues producen un pigmento polienico no isoprenoide de color rojo granadaeno 7 especifico del EGB que permite su identificacion inmediata 8 La identificacion del EGB puede tambien llevarse a cabo usando la tecnica de MALDI TOF Matrix Assisted Laser Desorption Ionization Time of Flight Mass Spectrometry 9 10 La identificacion tentativa del EGB tambien es posible por el aspecto de sus colonias en un medio cromogenico especifico donde crece como colonias de color distinto segun el medio empleado 4 11 12 Si para la deteccion e identificacion de EGBB se utilizan medios de cultivo cromogenicos siempre debe confirmarse que las colonias sospechosas con aspecto de EGB son realmente EGB utilizando una tecnica segura de identificacion e g deteccion de pigmento aglutinacion con latex la prueba CAMP o MALDI TOF 4 8 CAMP test positivoVirulencia EditarEGB puede encontrarse como comensal sin producir enfermedad microbiota normal en el aparato digestivo urinario y genital hasta en un 30 de los adultos colonizacion incluyendo la mujer embarazada 2 13 Sin embargo en ocasiones el EGB es capaz de burlar los mecanismos de defensa del huesped humano invadir los tejidos y causar infecciones graves Infeccion por estreptococo grupo B Entre los principales factores de virulencia del EGB pueden citarse 14 el polisacarido capsular y la beta hemolisina considerada identica al pigmento 6 15 16 17 18 19 Colonizacion e infeccion en la madre y el recien nacido EditarSe han publicado tasas de colonizacion por EGB en la embarazada sin causar infeccion portadores entre un 4 y 36 aunque la mayoria de estudios indican cifras sobre un 20 Encontrandose grandes variaciones entre paises e incluso entre regiones de un mismo pais Esta variacion en los datos publicados puede deberse a diferentes metodos de estudio y a diferencias en las poblaciones estudiadas 13 20 Aunque la colonizacion por EGB normalmente no ocasiona sintomas ni problemas a la mujer sana durante el embarazo puede provocar una enfermedad grave a la madre y al bebe durante la gestacion y despues del parto 2 21 habiendose relacionado con muerte fetal y parto prematuro 22 La infeccion por EGB puede causar infrecuentemente corioamnionitis infeccion grave de las membranas placentarias e infeccion posparto despues del nacimiento Las infeccion urinaria por EGB pueden inducir el trabajo de parto y provocar un parto prematuro 2 En los paises desarrollados EGB es la causa mas frecuente de infeccion bacteriana grave del recien nacido septicemia neumonia y meningitis pudiendo causar su muerte u originar secuelas permanentes 2 En el recien nacido la infeccion por EGB causa dos sindromes clinicos diferentes la infeccion de comienzo precoz Early Onset Disease EOD y la infeccion de comienzo tardio Late Onset Disease LOD 2 La infeccion de comienzo precoz se desarrolla en los primeros siete dias de vida la gran mayoria de casos aparecen en las primeras 24 horas de vida casi siempre como sepsis sin foco neumonia o meningitis Los recien nacidos pueden contraer la infeccion intrautero o mas frecuentemente al pasar por el tracto genital durante el parto La transmision vertical madre recien nacido ocurre durante el parto y aproximadamente un 50 de los recien nacidos de madres colonizadas por EGB estan tambien colonizados En ausencia de medidas de prevencion 1 2 de los recien nacidos de madres colonizadas desarrollan EOD 23 En US la incidencia de la EOD antes de la instauracion de medidas de prevencion era del 0 7 al 3 7 por mil recien nacidos 2 y en Europa se han comunicado incidencias desde 0 2 a 3 25 por mil recien nacidos 20 Diversos factores favorecen el desarrollo de la infeccion por EGB de comienzo precoz en un recien nacido cuya madre esta colonizada por EGB 11 21 Aunque el riesgo fundamental para que el recien nacido desarrolle una infeccion neonatal por EGB es la colonizacion de la madre 21 otros factores de riego incluyen prematuridad coriamnionitis materna rotura prolongada de membranas mas de 18 h fiebre intraparto un hermano anterior que haya sufrido EOD y la bacteriuria por EGB durante el embarazo 11 21 Otro importante factor de riesgo es la exposicion a una alta concentracion de EGB en el canal del parto Sin embargo la mayoria de los recien nacidos que desarrollan EOD nacen de madres que no presentan ninguno de estos factores 11 La mortalidad por EOD que en los anos 70 era de un 50 ha declinado actualmente en los paises desarrollados a un 4 8 fundamentalmente por los avances en los cuidados neonatales siendo mas alta entre los recien nacidos prematuros 11 24 La infeccion por EGB de comienzo tardio aparece despues de una semana desde el nacimiento hasta los 90 dias de vida presentandose comunmente como bacteriemia o meningitis sin que en muchos casos pueda conocerse el mecanismo de infeccion Cuando LOD cursa como meningitis son frecuentes las secuelas permanentes como retraso mental o sordera 2 25 Como evitar la infeccion neonatal EditarLa unica alternativa que hasta ahora se ha mostrado eficaz para prevenir la infeccion neonatal precoz por EGB es administrar por via intravenosa a la gestante colonizada por EGB un antibiotico adecuado profilaxis antibiotica durante un minimo de 4 horas antes del final del parto Esta conducta reduce la transmision del EGB al recien nacido y previene que este desarrolle infeccion por EGB Los antibioticos utilizados son penicilina y ampicilina y en caso de hipersensibilidad reaccion alergica cefazolina clindamicina o vancomicina 11 21 26 27 Para seleccionar las madres candidatas a recibir profilaxis antibiotica existen dos estrategias Una se basa en detectar las portadoras de EGB en la semana 35 37 de embarazo cribado universal pesquisa universal y suministrar profilaxis antibiotica durante el parto a todas las madres colonizadas por EGB Adicionalmente se debe administrar profilaxis a las embarazadas que presentan factores de riesgo y cuyo estado de portadora de EGB se desconoce en el momento del parto La otra estrategia selecciona a las candidatas a recibir profilaxis antibiotica basandose en la sola presencia de los citados factores de riesgo 11 21 28 Los Centros para el Control y la Prevencion de Enfermedades en ingles Centers for Disease Control and Prevention CDC publicaron sus recomendaciones actualizadas para las prevencion de la infeccion neonatal por EGB en 2010 11 En el ano 2018 los CDC transfirieron la actualizacion de sus recomendaciones al colegio americano de obstetras y ginecologos American College of Obstetricians and Gynecologists ACOG a la Academia Americana de Pediatria y a la Sociedad Americana de Microbiologia que en 2019 y 2020 han publicado documentos actualizado de recomendaciones para prevencion de la infeccion neonatal por EGB 8 21 27 El documento de la ACOG no introduce novedades importantes sobre las recomendaciones de los CDC La novedad es la recomendacion de efectuar la deteccion de EGB en la embarazada en la semana 36 37 en vez de 35 37 Esta nueva recomendacion que se ha mostrado mas efectiva 29 tiene por objeto hacer valido la deteccion de EGB hasta cubrir los partos en la semana 41 dada la validez de solo 5 semanas de la pruebas de deteccion de EGB en la embarazada 30 La estrategia de cribado universal se sigue en la mayoria de paises occidentales como USA Espana Francia Belgica Canada Australia Argentina etc La estrategia basada en factores de riesgo es seguida en la UE en UK y Holanda 20 Esta estrategia se muestra menos eficaz pues mas de la mitad de los casos de infeccion precoz se presentan en recien nacidos de embarazadas sin factores de riesgo aparentes 24 Pero desafortunadamente la profilaxis intraparto no es eficaz para prevenir la infeccion neonatal de comienzo tardio 20 21 Desarrollo de una vacuna Editar La alternativa mas eficaz para prevenir la infeccion por EGB sera una vacuna capaz de provocar una adecuada respuesta inmune Esta vacuna administrada a la madre protegeria al recien nacido frente a la infeccion por EGB de comienzo precoz y tambien frente a la infeccion de comienzo tardio asi mismo protegeria a los adultos susceptibles El polisacarido de la capsula del EGB es un importante factor de virulencia y constituye un excelente candidato para el desarrollo de vacunas para prevenir la infeccion por EGB 20 31 Actualmente en adicion a las vacunas basadas en el polisacarido capsular estan en desarrollo y ensayo vacunas basadas en proteinas de superficie del EGB 31 32 Pero aunque existen estudios avanzados y ensayos clinicos avanzados una vacuna efectiva aun no esta disponible para su uso generalizado 20 33 34 35 Deteccion de portadores EditarAunque el estado de portadora durante el embarazo puede ser intermitente se acepta que los cultivos vagino rectales para detectar la colonizacion por EGB realizados con menos de 5 semanas antes del parto predicen adecuadamente el estado de portadora de EGB durante el parto sin embargo los cultivos realizados con anterioridad a 5 semanas no son fiables 11 21 36 30 Las ultimas recomendaciones de la ACOG recomiendan efectuar el cultivo para deteccion de EGB entre las semanas 36 y 37 de embarazo 21 La muestras a estudiar son muestras vaginales y rectales tomadas con torunda 11 21 Actualmente se recomienda usar escobillones floked para la toma de las muestras vaginales y rectales pues este tipo de escobillones permite una mejor liberacion de la muestra al medio de cultivo 8 La tecnica recomendada por los Centros para el Control y Prevencion de Enfermedades de Estados Unidos Centers for Disease Control and Prevention CDC 11 y por la Sociedad Americana de Microbiologia American Society for Microbiology ASM 8 requiere incubar las muestras vaginales y rectales en un caldo de enriquecimiento selectivo Todd Hewitt con antibioticos y posterior subcultivo en agar sangre e identificacion como EGB de las colonias sospechosas Tambien es adecuado subcultivar el caldo selectivo en medio Granada donde la aparicion de colonias rojas es demostrativa de la presencia de EGB 4 37 38 pueden utilizarse medios de cultivo cromogenicos donde la aparicion de colonias de color determinado indica la presencia de EGB 11 Cuando se utilizan medios cromogenicos debe confirmarse que las colonias sospechosas con aspecto de EGB son realmente EGB mediante un procedimiento adecuado de confirmacion e g aglutinacion con latex o el test CAMP 4 Para detectar EGB en muestras vaginales y rectales tambien pueden utilizarse directamente o tras una fase de enriquecimiento por cultivo en caldo selectivo tecnicas moleculares de amplificacion de acidos nucleicos como la reaccion en cadena de la polimerasa Polymerase chain reaction PCR 11 Las pruebas rapidas para detectar EGB fundamentalmente tecnicas moleculares pueden ser en el futuro efectivas como substituto del cultivo para detectar las madres portadoras de EGB Pero estas pruebas deben ser aun mejoradas para su uso como point of care testing POCT que pueda ser realizado en la sala de partos y reemplazar a la deteccion del EGB por cultivo 11 21 Un inconveniente de estas tecnicas es que actualmente no permiten conocer la sensibilidad a los antibioticos de la cepa de EGB lo que es un problema serio si existe alergia a la penicilina 11 21 Colonias rojas de S agalactiae en agar Granada Cultivo vagino rectal 18h incubacion anaerobiosis 36 CInfeccion en animales EditarEGB fue primariamente identificado como un patogeno animal causante principal de mastitis bovina 39 causando importantes perdidas en la produccion de leche y por ello fue nombrado agalactiae sin leche La mastitis provocada por EGB puede tener un importante efecto sobre la cantidad y calidad de la leche producida y esta asociada con contajes elevados de celulas y bacterias en la leche 40 EGB se ha encontrado tambien en multiples especies animales como pollos camellos caballos lagartos ranas hamster gatos ratones monos y peces 41 Las infecciones por EGB en peces causan septicemia y hemorragias internas y externas constituyendo una importante fuente de perdidas en las piscifactorias 42 Referencias Editar a b Whiley RA Hardie JM 2009 Genus I Streptococcus Rosenbach 1884 Bergey s Manual of Systematic Bacteriology Vol 3 The Firmicutes 2nd edicion pp 655 711 a b c d e f g h Edwards MS Nizet V 2011 Group B streptococcal infections Infectious Diseases of the Fetus and Newborn Infant 7th edicion Elsevier pp 419 469 ISBN 978 0 443 06839 3 Slotved HC Kong F Lambertsen L Sauer S Gilbert GL 2007 Serotype IX a Proposed New Streptococcus agalactiae Serotype J Clin Microbiol 45 9 2929 36 doi 10 1128 JCM 00117 07 Consultado el 17 de noviembre de 2019 a b c d e Rosa Fraile M Spellerberg B 2017 Reliable Detection of Group B Streptococcus in the Clinical Laboratory Journal of Clinical Microbiology 55 9 2590 2598 PMID 28659318 doi 10 1128 JCM 00582 17 Consultado el 19 de noviembre de 2019 a b c Tille P 2014 Bailey amp Scott s Diagnostic Microbiology 13th edicion Elsevier Mosby ISBN 978 0 323 08330 0 a b Rosa Fraile M Dramsi S Spellerberg B 2014 Group B streptococcal haemolysin and pigment a tale of twins FEMS Microbiol Rev 38 932 946 Rosa Fraile M Rodriguez Granger J Haidour Benamin A Cuerva JM Sampedro A 2006 Granadaene proposed structure of the group B Streptococcus polyenic pigment Appl Environ Microbiol 72 6367 70 doi 10 1128 AEM 00756 06 Consultado el 15 Noviembre 2019 a b c d e Filkins L Hauser J Robinson Dunn B Tibbetts R Boyanton B Revell P March 10 2020 American Society for Microbiology Guidelines for the Detection and Identification of Group B Streptococcus en ingles Consultado el 6 March 2021 Binghuai L Yanli S Shuchen Z Fengxia Z Dong L Yanchao C 2014 Use of MALDI TOF mass spectrometry for rapid identification of group B Streptococcus on chromID Strepto B agar Int J Infect Dis 2014 27 44 8 doi 10 1016 j ijid 2014 06 023 To KN Cornwell E Daniel R Goonesekera S Jauneikaite E Chalker V Le Doare K 2019 Evaluation of matrix assisted laser desorption ionisation time of flight mass spectrometry MALDI TOF MS for the Identification of Group B Streptococcus BMC Res Notes 2019 12 85 doi 10 1186 s13104 019 4119 1 Consultado el 17 de noviembre de 2019 a b c d e f g h i j k l m n n Verani JR McGee L Schrag SJ 2010 Prevention of perinatal group B streptococcal disease revised guidelines from CDC 2010 MMWR Recomm Rep 59 RR 10 1 32 El Aila NA Tency I Claeys G Saerens B Cools P Verstraelen H Temmerman M Verhelst R Vaneechoutte M 2010 Comparison of different sampling techniques and of different culture methods for detection of group B streptococcus carriage in pregnant women BMC Infect Dis 2010 10 285 doi 10 1186 1471 2334 10 285 Consultado el 18 de noviembre de 2019 a b Barcaite E Bartusevicius A Tameliene R KliucinskasM Maleckiene L Nadisauskiene R 2014 Prevalence of maternal group B streptococcal colonisation in European countries Acta Obstet Gynecol Scand 87 260 271 Rajagopal L 2009 Understanding the regulation of Group B Streptococcal virulence factors Future Microbiol 4 201 221 Whidbey C Harrell MI Burnside K Ngo L Becraft AK Iyer LM Aravind L Hitti J Waldorf KM Rajagopal L 2013 A hemolytic pigment of Group B Streptococcus allows bacterial penetration of human placenta J Exp Med 3 1265 1281 Whidbey C Vornhagen J Gendrin C Boldenow E Samson JM Doering K Ngo L Ezekwe EA Jr Gundlach JH Elovitz MA Liggitt D Duncan JA Adams Waldorf KM Rajagopal L 2015 A streptococcal lipid toxin induces membrane permeabilization and pyroptosis leading to fetal injury EMBO Mol Med 7 488 505 Leclercq SY Sullivan MJ Ipe DS Smith JP Cripps AW Ulett GC 2016 Jul 7 6 29000 Pathogenesis of Streptococcus urinary tract infection depends on bacterial strain and b hemolysin cytolysin that mediates cytotoxicity cytokine synthesis inflammation and virulence Sci Rep 2016 Jul 7 6 29000 doi 10 1038 srep29000 Armistead B Oler E Adams Waldorf K Rajagopal 2019 The Double Life of Group B Streptococcus Asymptomatic Colonizer and Potent Pathogen J Mol Biol 431 2914 2931 doi 10 1016 j jmb 2019 01 035 Consultado el 3 de enero de 2021 Blair Armistead Christopher Whidbey Lakshminarayan M Iyer Pilar Herrero Foncubierta Phoenicia Quach Ali Haidour L Aravind Juan Manuel Cuerva Heather B Jaspan Lakshmi Rajagopal 2020 The cyl Genes Reveal the Biosynthetic and Evolutionary Origins of the Group B Streptococcus Hemolytic Lipid Granadaene Front Microbiol 10 3123 doi 10 3389 fmicb 2019 03123 Consultado el 3 de enero de 2021 a b c d e f Rodriguez Granger J Alvargonzalez JC Berardi A Berner R Kunze M Hufnagel M Melin P Decheva A Orefici G Poyart C Telford J Efstratiou A Killian M Krizova P Baldassarri L Spellerberg B Puertas A Rosa Fraile M Prevention of group B streptococcal neonatal disease revisited The DEVANI European project Eur J Clin Microbiol Infect Dis 31 2097 2104 a b c d e f g h i j k l m The American College of Oftetricians and Ginecologists 2019 Prevention of Group B Streptococcal Early Onset Disease in Newborns ACOG Committee Opinion Number 782 Obstet Gynecol 2019 134 e19 e40 10 1097 AOG 0000000000003334 doi 10 1097 AOG 0000000000003334 Consultado el 16 de noviembre de 2019 Muller AE Oostvogel PM Steegers EA Dorr PJ 2006 Morbidity related to maternal group B streptococcal infections Acta Obstet Gynecol Scand 2006 85 1027 37 doi 10 1080 00016340600780508 Consultado el 16 de noviembre de 2019 Boyer KM Gotoff SP 1985 Strategies for chemoprophylaxis of GBS early onset infections Antibiot Chemother 35 267 280 a b Gimenez M Sanfeliu I Sierra M Dopico E Juncosa T Andreu A Lite J Guardia C Sanchez F Bosch J 2014 Evolucion de la sepsis neonatal precoz por Streptococcus agalactiae en el area de Barcelona 2004 2010 Analisis de los fallos del cumplimiento del protocolo de prevencion Enferm Infecc Microbiol Clin Libster R Edwards KM Levent F Edwards MS Rench MA Castagnini LA Cooper T Sparks RC Baker CJ Shah PE 2012 Long term outcomes of group B streptococcal meningitis Pediatrics 130 e8 15 Alos Cortes JI Andreu Domingo A Arribas Mir L Cabero Roura L Cueto Lopez M Lopez Sastre J Melchor Marcos JC Puertas Prieto A Rosa Fraile M Salcedo Abizanda S Sanchez Luna M Sanchez Perez MJ Torrejon Cardoso R 2012 Prevencion de la infeccion perinatal por estreptococo del grupo B Recomendaciones espanolas Actualizacion 2012 Rev Esp Quimioter 2012 25 79 88 25 79 88 Consultado el 18 de noviembre de 2019 a b Puopolo KM Lynfield R Cummings JJ AAP COMMITTEE ON FETUS AND NEWBORN AAP COMMITTEE ON INFECTIOUS DISEASES 2019 Management of Infants at Risk for Group B Streptococcal Disease Management of Infants at Risk for Group B Streptococcal Disease 144 e20191881 doi 10 1542 peds 2019 1881 Consultado el 3 de enero de 2021 Clifford V Garland SM Grimwood K 2011 doi 10 1111 j 1440 1754 2011 02203 x Prevention of neonatal group B streptococcus disease in the 21st century J Paediatr Child Health 48 808 815 Williams M Zantow E Turrentine M 2020 Cost Effectiveness of Latest Recommendations for Group B Streptococci Screening in the United States Obstet Ginecol 135 789 798 doi 10 1097 AOG 0000000000003649 a b Yancey MK Schuchat A Brown LK Ventura VL Markenson GR 1996 The accuracy of late antenatal screening cultures in predicting genital group B streptococcal colonization at delivery Obstet Gynecol 88 5 811 5 doi 10 1016 0029 7844 96 00320 1 a b Song JY Lim JH Lim S Yong Z Seo HS 2018 Progress toward a group B streptococcal vaccine Hum Vaccin Immunother 2018 14 11 2669 2681 doi 10 1080 21645515 2018 1493326 Consultado el 18 Noviembre 2019 Carreras Abad C Ramkhelawon L Heath PT Le Doare K 2020 A Vaccine Against Group B Streptococcus Recent Advances Infect Drug Resist en ingles 13 263 1272 doi 10 2147 IDR S203454 Consultado el 3 de enero de 2021 Baker CJ Carey VJ Rench MA Edwards MS Hillier SH Kasper DL Platt R 2014 Maternal Antibody at Delivery Protects Neonates From Early Onset Group B Streptococcal Disease J Infect Dis 209 781 788 Heath PT 2016 Status of vaccine research and development of vaccines for GBS Vaccine 34 28762879 PMID 26988258 doi 10 1016 j vaccine 2015 12 072 j vaccine 2015 12 072 Consultado el 27 de noviembre de 2017 Puertas Prieto A Lara Oya A Liebana Martos C Rodriguez Granger J Cobo F Sampedro A Padilla A Gutierrez Fernandez J Manzanares Galan S Cueto Lopez M Rosa Fraile M Navarro Mari JM 2017 Streptococcus agalactiae prevencion y desarrollo de vacunas Rev Esp Quimioter 30 5 312 318 PMID 28945063 Consultado el 27 de noviembre de 2017 Valkenburg van den Berg AW Houtman Roelofsen RL Oostvogel PM Dekker FW Dorr PJ Sprij AJ 2010 Timing of group B streptococcus screening in pregnancy a systematic review Gynecol Obstet Invest 69 174 183 Rosa Fraile M Rodriguez Granger J Cueto Lopez M Sampedro A Biel Gaye E Haro M amp Andreu A 1999 Use of Granada medium to detect group B streptococcal colonization in pregnant women J Clin Microbiol 37 2674 2677 Carey RB Group B Streptococci Chains amp Changes New Guidelines for the Prevention of Early Onset GBS Consultado el 17 de septiembre de 2015 Keefe GP 1997 Streptococcus agalactiae mastitis a review Can Vet J 38 429 437 Consultado el 19 de noviembre de 2019 Ruegg PL 2017 A 100 Year Review Mastitis detection management and prevention J Dairy Sci 2017 100 10381 10397 doi 10 3168 jds 2017 13023 Consultado el 17 Noviembre 2018 Garcia JC Klesius PH Evans JJ Shoemaker CA 2008 Non infectivity of cattle Streptococcus agalactiae in Nile tilapia Oreochromis niloticus and channel catfish Ictalurus punctatus Aquaculture 281 151 154 Evans JJ Klesius PH Pasnik DJ Bohnsack JF 2009 Human Streptococcus agalactiae isolate in Nile tilapia Oreochromis niloticus Emerg Infect Dis 15 774 776 Datos Q132949 Multimedia Streptococcus agalactiae Especies Streptococcus agalactiaeObtenido de https es wikipedia org w index php title Streptococcus agalactiae amp oldid 133771186, wikipedia, wiki, leyendo, leer, libro, biblioteca,

español

, española, descargar, gratis, descargar gratis, mp3, video, mp4, 3gp, jpg, jpeg, gif, png, imagen, música, canción, película, libro, juego, juegos