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ADN polimerasa

Las ADN polimerasas son enzimas (celulares o virales) que intervienen en el proceso de replicación del ADN. Llevan a cabo la síntesis de la nueva cadena de ADN emparejando los desoxirribonucleótidos trifosfato (dNTP) con los desoxirribonucleótidos complementarios correspondientes del ADN molde. Los dNTP que se usan en la replicación del ADN contienen tres fosfatos unidos al grupo hidroxilo 5' de la desoxirribosa y dependiendo de la base nitrogenada serán dATP, dTTP, dCTP o dGTP. La reacción fundamental es una transferencia de un grupo fosfato en la que el grupo 3'-OH actúa como nucleófilo en el extremo 3' de la cadena que está en crecimiento. El ataque nucleofílico se produce sobre el fosfato α (el más próximo a la desoxirribosa) del desoxirribonucleósido 5' trifosfato que entra, liberándose pirofosfato inorgánico y alargándose el ADN (al formarse un nuevo enlace fosfodiéster). A diferencia de la mayoría de procesos biológicos que ocurren en la célula en los que solo se separa un grupo fosfato (Pi), durante la replicación se separan los dos últimos grupos fosfato, en forma de grupo pirofosfato (PPi)

ADN polimerasa ADN-dirigida

Estructura tridimensional de los motivos hélice-giro-hélice de unión al ADN de una ADN polimerasa beta humana (basada en el archivo PDB 7ICG )
Estructuras disponibles
PDB
Identificadores
Identificadores
externos
Número EC 2.7.7.7
Número CAS 9012-90-2
Ortólogos
Especies
PubMed (Búsqueda)
PMC (Búsqueda)

Este proceso se puede resumir en una ecuación química:

(DNA)n + dNTP ↔ (DNA)n+1 + PPi

A pesar de que la ADN polimerasa solo tiene un sitio activo para emparejar los cuatro dNTPs diferentes, la unión correcta de los pares de bases A:T, C:G es posible basándose en la geometría de estos: si la unión es incorrecta se produce un desplazamiento del fosfato α haciendo más difícil su unión al extremo 3'-OH y ralentizando así el ritmo de catalísis, lo que da lugar a que la ADN polimerasa añada preferentemente las bases correctas.

Las ADN polimerasas pueden añadir hasta 1000 nucleótidos por segundo. Esto es debido a su naturaleza, es decir, el número de nucleótidos que son capaces de añadir cada vez que se asocian al molde de ADN que van a copiar. Dado que la adición de los nucleótidos es un proceso que dura unos milisegundos, la velocidad de catálisis va a depender del tiempo que la ADN polimerasa permanece unida al ADN, esto es, de su procesividad.

Función correctora exonucleasa 3' → 5' de las ADN polimerasas.

El crecimiento de la cadena se produce en dirección 5' → 3', ya que se requiere de un grupo 3'-OH libre para el inicio de la síntesis puesto que este es el que realiza el ataque nucleofílico sobre el fosfato α del dNTP, de forma que las ADN polimerasas requieren de un iniciador 3'-OH (que puede ser de ADN o ARN) llamado cebador que es sintetizado por la ARN primasa. El extremo 3' del cebador se denomina extremo cebador.

Las ADN polimerasas también realizan otras funciones durante el proceso de replicación. Además de participar en la elongación, desempeñan una función correctora y reparadora gracias a su actividad exonucleasa 3', que les confiere la capacidad de degradar el ADN partiendo de un extremo de este. Es importante que existan estos mecanismos de corrección ya que de lo contrario los errores producidos durante la copia del ADN darían lugar a mutaciones.

Funciones

Las ADN polimerasas pueden agregar nucleótidos libres solo al extremo 3 ' de la cadena de ADN en formación. Esto provoca que el alargamiento de la cadena en formación se realice en la dirección 5'-3 '. Ninguna ADN polimerasa conocida puede iniciar una hebra de ADN nuevamente, es decir, no puede colocar el primer nucleótido en la hebra, luego de unir el segundo, luego el tercero, y así sucesivamente. Todo lo que pueden hacer es alargar una cadena existente por su extremo 3'-OH, por lo que siempre debe haber un fragmento inicial ya formado. Esta es la razón por la que la ADN polimerasa necesita un cebador pre-formado al que agregar nucleótidos. Los cebadores pueden estar formados por ARN o ADN. En la replicación del ADN, las dos primeras bases son siempre ARN y son sintetizadas por otra enzima llamada primasa. También se requiere una enzima llamada helicasa para desenredar el ADN y deshacer en esa región su estructura de doble hebra y formar la estructura de dos hebras simples bifurcadas (esta región es la horquilla de replicación), lo que facilita la replicación de cada una de las hebras siguiendo el modelo semiconservador de replicación del ADN.

Otra propiedad que tienen algunas ADN polimerasas, pero no todas, es la corrección de errores. Este proceso corrige los errores producidos durante la formación del ADN neosintetizado. Cuando se reconoce un par de bases incorrectamente colocado, la ADN polimerasa invierte la dirección de su movimiento al retrasar un par de bases. Esta actividad exonucleasa 3'-5' de la enzima permite eliminar el par de bases incorrecto para luego ser reemplazado por el correcto, la propia polimerasa que continuará la replicación. Esta actividad se llama corrección de pruebas. Las ADN polimerasas se utilizan ampliamente en experimentos de biología molecular.

Las ADN polimerasas tienen una estructura muy conservada, lo que significa que sus subunidades catalíticas varían muy poco de una especie a otra. Las estructuras conservadas generalmente realizan funciones importantes e insustituibles en la célula, cuyo mantenimiento produce una serie de ventajas.

Estructura

Las ADN polimerasas conocidas tienen una estructura muy conservada, lo que significa que sus subunidades catalíticas generales varían muy poco de una especie a otra, independientemente de sus estructuras de dominio. Las estructuras conservadas suelen indicar funciones importantes e insustituibles de la célula, cuyo mantenimiento proporciona ventajas evolutivas. La forma se puede describir como una mano derecha con dominios de pulgar, dedo y palma. El dominio de la palma parece funcionar catalizando la transferencia de grupos fosforilo en la reacción de transferencia de fosforilo. El ADN se une a la palma cuando la enzima está activa. Se cree que esta reacción está catalizada por un mecanismo de iones de dos metales. El dominio de los dedos funciona para unir los nucleósidos trifosfatos.con la base de la plantilla. El dominio del pulgar juega un papel potencial en la procesividad, la translocación y el posicionamiento del ADN.

Procesividad

La rápida catálisis de la ADN polimerasa se debe a su naturaleza procesiva. La procesividad es una característica de las enzimas que funcionan sobre sustratos poliméricos. En el caso de la ADN polimerasa, el grado de procesividad se refiere al número medio de nucleótidos añadidos cada vez que la enzima se une a una plantilla. La ADN polimerasa promedio requiere aproximadamente un segundo para localizar y unir una unión cebador / molde. Una vez que se une, una ADN polimerasa no procesadora agrega nucleótidos a una velocidad de un nucleótido por segundo. Sin embargo, las ADN polimerasas procesivas agregan múltiples nucleótidos por segundo, lo que aumenta drásticamente la velocidad de síntesis de ADN. El grado de procesividad es directamente proporcional a la tasa de síntesis de ADN. La tasa de síntesis de ADN en una célula viva se determinó primero como la tasa de elongación del ADN del fago T4 en bacterias infectadas con bacteriófagos. Durante el período de aumento exponencial del ADN a 37 ° C, la tasa fue de 749 nucleótidos por segundo.

La capacidad de la ADN polimerasa para deslizarse a lo largo de la plantilla de ADN permite una mayor procesividad. Hay un aumento dramático en la procesividad en la bifurcación de replicación. Este aumento se ve facilitado por la asociación de la ADN polimerasa con proteínas conocidas como abrazadera deslizante de ADN. Las pinzas son múltiples subunidades de proteínas asociadas en forma de anillo. Utilizando la hidrólisis de ATP, una clase de proteínas conocidas como proteínas de carga de abrazadera deslizante abren la estructura de anillo de las abrazaderas deslizantes de ADN permitiendo la unión y liberación de la hebra de ADN. Interacción proteína-proteínacon la pinza evita que la ADN polimerasa se difunda desde la plantilla de ADN, lo que garantiza que la enzima se una a la misma unión cebador/plantilla y continúe la replicación. La ADN polimerasa cambia de conformación, aumentando la afinidad por la pinza cuando se asocia con ella y disminuyendo la afinidad cuando completa la replicación de un tramo de ADN para permitir la liberación de la pinza.

Reacción en cadena de la polimerasa

La propiedad de las ADN polimerasas para replicar hebras de ADN se utiliza para la reacción en cadena de la polimerasa, conocida como PCR por sus siglas en inglés, para obtener un gran número de copias de un fragmento de ADN particular, amplificándolo para propósitos de investigación. En los procesos de PCR se requiere la utilización de polimerasas termoestables, como la polimerasa Taq, debido a que es necesario aplicar altas temperaturas para desnaturalizar la molécula de ADN.

Familias de ADN polimerasas

Según la homología de su estructura y la secuencia de aminoácidos las ADN polimerasas se pueden clasificar en 6 familias. Las ADN polimerasas de los virus de ADN son difíciles de clasificar en los siguientes grupos debido a la alta divergencia de las secuencias virales.

  • Familia A: Incluye las ADN polimerasas eucariotas γ, θ, ν, la procariota I y la viral T7.
  • Familia B: Incluye las ADN polimerasas eucariotas ζ, α, δ, ε y la procariotas II. También se ha propuesto la inclusión de algunas ADN polimerasas virales.
  • Familia D: Incluye la ADN polimerasa procariota D y también se ha propuesto la inclusión de algunas ADN polimerasas virales.
  • Familia X: Incluye las ADN polimerasas eucariotas β, σ, λ, μ, TDT y la procariota III.
  • Familia Y: Incluye las ADN polimerasas eucariotas ι, κ, η y las procariotas IV y V.
  • Familia RT: Incluye la telomerasa exclusiva de los eucariotas y las transcriptasas inversas virales, eucariotas y procariotas.

ADN polimerasas procariotas

 
Holoenzima ADN Pol III de E. coli.
 
Actividad correctora exonucleasa 3' → 5' de la subunidad ε de la holoenzima ADN Pol III.

Las ADN polimerasas de los procariotas (arqueas y bacterias) son: las Pol I, II, III, IV, V, B, D y la RT cada una de ellas está especializada en una o más de éstas funciones según cuál sea su papel en la replicación. Las polimerasas procarióticas existen en dos formas: polimerasa central y holoenzima. La polimerasa central sintetiza ADN a partir de la plantilla de ADN, pero no puede iniciar la síntesis sola o con precisión. La holoenzima inicia la síntesis con precisión.

Pol I

Las polimerasas procariotas de la familia A incluyen la enzima ADN polimerasa I (Pol I), que está codificada por el gen polA y es ubicua entre los procariotas. Esta polimerasa reparadora participa en la reparación por escisión con actividad exonucleasa 3'-5 'y 5'-3' y en el procesamiento de fragmentos de Okazaki generados durante la síntesis de la hebra retrasada.[1]​ Pol I es la polimerasa más abundante y representa> 95% de la actividad polimerasa en E. coli; sin embargo, se han encontrado células que carecen de Pol I, lo que sugiere que la actividad de Pol I puede ser reemplazada por las otras cuatro polimerasas. Pol I agrega ~ 15-20 nucleótidos por segundo, mostrando así una pobre procesividad. En cambio, Pol I comienza a agregar nucleótidos en el cebador de ARN: unión de plantilla conocida como el origen de replicación (ori). Aproximadamente 400 pb aguas abajo del origen, la holoenzima Pol III se ensambla y se hace cargo de la replicación a una velocidad y naturaleza altamente procesivas.[2]

La polimerasa Taq es una enzima termoestable de esta familia que carece de capacidad de corrección de pruebas.[3]

Pol II

La ADN polimerasa II es una polimerasa de la familia B codificada por el gen polB. Pol II tiene actividad de exonucleasa 3'-5 'y participa en la reparación del ADN , el reinicio de la replicación para evitar lesiones, y su presencia celular puede pasar de ~ 30-50 copias por célula a ~ 200-300 durante la inducción de SOS. También se cree que Pol II es una copia de seguridad de Pol III, ya que puede interactuar con proteínas holoenzimáticas y asumir un alto nivel de procesividad. Se cree que el papel principal de Pol II es la capacidad de dirigir la actividad de la polimerasa en la bifurcación de replicación y ayudó a detener los desajustes terminales de derivación de Pol III.[4]

Pol III

La holoenzima de la ADN polimerasa III es la enzima principal involucrada en la replicación del ADN en los procariotas y pertenece a la familia de las polimerasas C. Consta de tres conjuntos: el núcleo pol III, el factor de procesividad de la abrazadera deslizante beta y el complejo de carga de la abrazadera. El núcleo consta de tres subunidades: α, el centro de actividad de la polimerasa, ɛ, corrector de pruebas exonucleolítico y θ, que puede actuar como estabilizador para ɛ. El factor de procesividad de la abrazadera deslizante beta también está presente por duplicado, uno para cada núcleo, para crear una abrazadera que encierra el ADN, lo que permite una alta procesividad.[5]​ El tercer conjunto es un complejo cargador de pinzas de siete subunidades (τ2γδδ′χψ).

El viejo "modelo de trombón" de los libros de texto describe un complejo de alargamiento con dos equivalentes de la enzima central en cada horquilla de replicación (RF), uno para cada hebra, el rezagado y el adelantado.[6]​ Sin embargo, la evidencia reciente de estudios de una sola molécula indica un promedio de tres equivalentes estequiométricos de enzima central en cada RF tanto para Pol III como para su contraparte en B. subtilis, PolC.[7]​ La microscopía fluorescente en la célula ha revelado que la síntesis de la cadena principal puede no ser completamente continua, y Pol III* (es decir, las subunidades α, ε, τ, δ y χ de la holoenzima sin la abrazadera deslizante ß2) tiene una alta frecuencia de disociación de los RF activos.[8]​ En estos estudios, la tasa de rotación de la horquilla de replicación fue de aproximadamente 10 s para Pol III *, 47 s para la pinza deslizante ß2 y 15 m para la helicasa DnaB. Esto sugiere que la helicasa DnaB puede permanecer asociada de manera estable en los RF y servir como un punto de nucleación para la holoenzima competente. Los estudios in vitro de una sola molécula han demostrado que Pol III * tiene una alta tasa de renovación de RF cuando está en exceso, pero permanece asociada de manera estable con horquillas de replicación cuando la concentración es limitante.[8]​ Otro estudio de una sola molécula mostró que la actividad de la helicasa de ADNB y el alargamiento de la hebra pueden proceder con una cinética estocástica desacoplada.[8]

Pol IV

La ADN polimerasa IV (Pol IV) es una ADN polimerasa propensa a errores que participa en mutagénesis no dirigida.[9]​ Pol IV es una polimerasa de la familia Y expresada por el gen dinB que se activa mediante la inducción de SOS causada por polimerasas estancadas en la bifurcación de replicación. Durante la inducción de SOS, la producción de Pol IV se multiplica por diez y una de las funciones durante este tiempo es interferir con la procesividad de la holoenzima Pol III. Esto crea un punto de control, detiene la replicación y da tiempo para reparar las lesiones del ADN a través de la vía de reparación adecuada.[10]​ Otra función de Pol IV es realizar la síntesis de translesiones en la bifurcación de replicación estancada como, por ejemplo, eludir los aductos de N2-desoxiguanina a un ritmo más rápido que atravesar el ADN no dañado. Las células que carecen del gen dinB tienen una mayor tasa de mutagénesis causada por agentes que dañan el ADN.[11]

Pol V

La ADN polimerasa V (Pol V) es una ADN polimerasa de la familia Y que participa en la respuesta SOS y en los mecanismos de reparación del ADN de la síntesis de translesión.[12]​ La transcripción de Pol V a través de los genes umuDC está altamente regulada para producir solo Pol V cuando el ADN dañado está presente en la célula y genera una respuesta SOS. Las polimerasas estancadas hacen que RecA se una al ssDNA, lo que hace que la proteína LexA se digiera automáticamente. LexA pierde entonces su capacidad para reprimir la transcripción del operón umuDC. La misma nucleoproteína RecA-ssDNA modifica postraduccionalmente la proteína UmuD en proteína UmuD '. UmuD y UmuD 'forman un heterodímero que interactúa con UmuC, que a su vez activa la actividad catalítica de la polimerasa de umuC en el ADN dañado.[13]​ Se ha propuesto un modelo de "cinturón de herramientas" de polimerasa para cambiar la pol III por la pol IV en una horquilla de replicación detenida, donde ambas polimerasas se unen simultáneamente a la pinza β.[14]​ Sin embargo, la participación de más de una polimerasa TLS trabajando en sucesión para evitar una lesión aún no se ha demostrado en E. coli. Además, Pol IV puede catalizar tanto la inserción como la extensión con alta eficiencia, mientras que pol V se considera la principal polimerasa SOS TLS. Un ejemplo es la derivación del entrecruzamiento de guanina timina intracatenaria donde se demostró, basándose en la diferencia en las firmas mutacionales de las dos polimerasas, que pol IV y pol V compiten por TLS del entrecruzamiento intracatenario.[14]

Familia D

En 1998, se descubrió la familia D de ADN polimerasas.[15]​ El complejo PolD es un heterodímero de dos cadenas, cada una codificada por DP1 (corrección pequeña) y DP2 (catalítico grande). A diferencia de otras ADN polimerasas, la estructura y el mecanismo del núcleo catalítico DP2 se parecen a los de las ARN polimerasas de múltiples subunidades. La interfaz DP1-DP2 se parece a la del dedo de zinc de polimerasa eucariota de clase B y su pequeña subunidad. DP1, una exonucleasa similar a Mre11, es probablemente el precursor de una pequeña subunidad de Pol α y ε, proporcionando capacidades de corrección de pruebas ahora perdidas en eucariotas. Su dominio HSH N-terminal es similar a las proteínas AAA, especialmente la subunidad δ y RuvB de Pol III , en estructura. DP2 tiene un dominio KH de clase II. PolD es más estable al calor y más preciso que la polimerasa Taq , pero aún no se ha comercializado. Se ha sugerido que la ADN polimerasa de la familia D fue la primera en evolucionar en organismos celulares y que la polimerasa replicativa del último antepasado común universal (LUCA) pertenecía a la familia D.[16]

Transcriptasa inversa (RT)

Es una ADN polimerasa dependiente de ARN (RdDp) que sintetiza ADN a partir de una plantilla de ARN. La familia de la transcriptasa inversa contiene tanto la funcionalidad de la ADN polimerasa como la funcionalidad de la ARNasa H, que degrada el ARN emparejado con el ADN. La transcriptasa inversa se emplea comúnmente en la amplificación de ARN con fines de investigación. Usando una plantilla de ARN, la PCR puede utilizar la transcriptasa inversa, creando una plantilla de ADN. Esta nueva plantilla de ADN se puede utilizar para una amplificación típica por PCR. Los productos de tal experimento son, por tanto, productos de PCR amplificados a partir de ARN.

La transcripción inversa se acompaña de un cambio de plantilla entre las dos copias del genoma (recombinación por elección de copia). De 5 a 14 eventos de recombinación por genoma ocurren en cada ciclo de replicación. El cambio de plantilla (recombinación) parece ser necesario para mantener la integridad del genoma y como un mecanismo de reparación para salvar los genomas dañados

ADN polimerasa en eucariotas

Hay varios tipos de ADN polimerasa en los eucariotas: son las Pol ζ, α, δ, γ, θ, ν, ε, β, σ, λ, μ, ι, κ, η, TDT y la RT. La primasa (que es parte de la molécula de ADN polimerasa α) sintetiza cebadores de ARN y además comienza la elongación con ADN de las dos cadenas. Después se produce un cambio de polimerasa y entra la ADN polimerasa σ, que continúa la síntesis.

Polimerasas β, λ, σ, μ (beta, lambda, sigma, mu) y TdT

Las polimerasas de la familia X contienen la polimerasa eucariota pol β (beta) bien conocida, así como otras polimerasas eucariotas como Pol σ (sigma), Pol λ (lambda) , Pol μ (mu) y desoxinucleotidil transferasa terminal (TdT) . Las polimerasas de la familia X se encuentran principalmente en vertebrados y algunas se encuentran en plantas y hongos. Estas polimerasas tienen regiones altamente conservadas que incluyen dos motivos hélice-horquilla-hélice que son imperativos en las interacciones ADN-polimerasa. Un motivo está ubicado en el dominio de 8 kDa que interactúa con el ADN corriente abajo y un motivo está ubicado en el dominio del pulgar que interactúa con la cadena del cebador. Pol β, codificado por el gen POLB, es necesario para la reparación por escisión de base de parche corto, una vía de reparación del ADN que es esencial para reparar bases alquiladas u oxidadas, así como sitios abásicos . Pol λ y Pol μ, codificados por los genes POLL y POLM respectivamente, están involucrados en la unión de extremos no homólogos , un mecanismo para volver a unir las roturas de doble cadena del ADN debido al peróxido de hidrógeno y la radiación ionizante, respectivamente. TdT se expresa sólo en tejido linfoide y añade "n nucleótidos" a las roturas de doble hebra formadas durante la recombinación V (D) J para promover la diversidad inmunológica.[17]

Polimerasas α, δ y ε (alfa, delta y épsilon)

Pol α (alfa) , Pol δ (delta) y Pol ε (épsilon) son miembros de las polimerasas de la familia B y son las principales polimerasas implicadas en la replicación del ADN nuclear. El complejo Pol α (complejo pol α-ADN primasa) consta de cuatro subunidades: la subunidad catalítica POLA1 , la subunidad reguladora POLA2 y las subunidades primasa pequeña y grande PRIM1 y PRIM2, respectivamente. Una vez que la primasa ha creado el cebador de ARN, Pol α comienza la replicación alargando el cebador con ~ 20 nucleótidos. Debido a su alta procesividad, Pol δ se hace cargo de la síntesis de las cadenas principales y retrasadas de Pol α. Pol δ se expresa mediante los genes POLD1 , creando la subunidad catalítica, POLD2 , POLD3 y POLD4 creando las otras subunidades que interactúan con el antígeno nuclear de células proliferantes (PCNA), que es una abrazadera de ADN que permite que Pol δ posea procesividad. Pol ε está codificado por el gen POLE1, la subunidad catalítica, POLE2 y POLE3. Se ha informado que la función de Pol ε es extender la cadena principal durante la replicación, mientras que Pol δ replica principalmente la hebra rezagada; sin embargo, evidencia reciente sugirió que Pol δ también podría tener un papel en la replicación de la cadena principal de ADN. La región C-terminal de Pol ε "reliquia de la polimerasa", a pesar de ser innecesaria para la actividad de la polimerasa, se cree que es esencial para la vitalidad celular. Se cree que la región C-terminal proporciona un punto de control antes de entrar en anafase, proporciona estabilidad a la holoenzima y agrega proteínas a la holoenzima necesarias para el inicio de la replicación. Pol ε tiene un dominio "palma" más grande que proporciona alta procesividad independientemente del PCNA.

En comparación con otras polimerasas de la familia B, la familia de exonucleasas DEDD responsable de la corrección de pruebas está inactivada en Pol α. Pol ε es único en el sentido de que tiene dos dominios con dedos de zinc y una copia inactiva de otra polimerasa de la familia B en su C-terminal. La presencia de este dedo de zinc tiene implicaciones en los orígenes de Eukaryota, que en este caso se coloca en el grupo Asgard con polimerasa arqueal B3.

Polimerasas η, ι y κ (eta, iota y kappa)

Pol η (eta) , Pol ι (iota) y Pol κ (kappa), son ADN polimerasas de la familia Y implicadas en la reparación del ADN por síntesis de translesión y codificadas por los genes POLH, POLI y POLK respectivamente. Los miembros de la Familia Y tienen cinco motivos comunes para ayudar a unir el sustrato y el extremo del cebador y todos incluyen los dominios típicos del pulgar, la palma y el dedo de la mano derecha con dominios agregados como el dedo meñique (LF), el dominio asociado a la polimerasa (PAD) o muñeca. El sitio activo, sin embargo, difiere entre los miembros de la familia debido a las diferentes lesiones que se reparan. Las polimerasas de la familia Y son polimerasas de baja fidelidad, pero se ha demostrado que hacen más bien que mal, ya que las mutaciones que afectan a la polimerasa pueden causar diversas enfermedades, como cáncer de piel y la variante de Xeroderma Pigmentosum (XPS). La importancia de estas polimerasas se evidencia por el hecho de que el gen que codifica la ADN polimerasa η se conoce como XPV, porque la pérdida de este gen da como resultado la variante Xeroderma Pigmentosum de la enfermedad. Pol η es particularmente importante para permitir una síntesis de translesión precisa del daño del ADN resultante de la radiación ultravioleta. La funcionalidad de Pol κ no se comprende completamente, pero los investigadores han encontrado dos funciones probables. Se cree que Pol κ actúa como un extensor o un insertador de una base específica en ciertas lesiones del ADN. Las tres polimerasas de síntesis de translesiones, junto con Rev1, se reclutan en las lesiones dañadas a través de ADN polimerasas replicativas estancadas. Hay dos vías de reparación de daños que llevan a los investigadores a concluir que la vía elegida depende de qué hebra contiene el daño, la hebra principal o la rezagada.

Polimerasas Rev1 y ζ (zeta)

La Pol ζ otra polimerasa de la familia B, está formada por dos subunidades Rev3, la subunidad catalítica, y Rev7 (MAD2L2), que aumenta la función catalítica de la polimerasa y participa en la síntesis de translesiones. Pol ζ carece de actividad exonucleasa 3 'a 5', es único porque puede extender cebadores con desajustes terminales. Rev1 tiene tres regiones de interés en el dominio BRCT , dominio de unión a ubiquitina, y dominio C-terminal y tiene capacidad de transferasa de dCMP, que agrega lesiones opuestas de desoxicitidina que detendrían las polimerasas replicativas Pol δ y Pol ε. Estas polimerasas estancadas activan complejos de ubiquitina que a su vez disocian las polimerasas de replicación y reclutan Pol ζ y Rev1. Juntos, Pol ζ y Rev1 añaden desoxicitidina y Pol ζ se extiende más allá de la lesión. A través de un proceso aún indeterminado, Pol ζ se disocia y las polimerasas de replicación se reasocian y continúan la replicación. Pol ζ y Rev1 no son necesarios para la replicación, pero la pérdida del gen REV3 en la levadura en gemación puede causar una mayor sensibilidad a los agentes que dañan el ADN debido al colapso de las horquillas de replicación donde las polimerasas de replicación se han estancado.

Polimerasas γ, θ y ν (gamma, theta y nu)

Pol γ (gamma), Pol θ (theta) y Pol ν (nu) son polimerasas de la familia A. Durante mucho tiempo se pensó que Pol γ, codificada por el gen POLG era la única polimerasa mitocondrial. Sin embargo, investigaciones recientes muestran que al menos Pol β (beta) , una polimerasa de la Familia X, también está presente en las mitocondrias. Cualquier mutación que produzca una Pol γ limitada o que no funcione tiene un efecto significativo sobre el ADNmt y es la causa más común de trastornos mitocondriales hereditarios autosómicos. Pol γ contiene un dominio de polimerasa C-terminal y un dominio de exonucleasa N-terminal 3'-5 'que están conectados a través de la región enlazadora, que se une a la subunidad accesoria. La subunidad accesoria se une al ADN y es necesaria para la procesividad de Pol γ. La mutación puntual A467T en la región enlazadora es responsable de más de un tercio de todos los trastornos mitocondriales asociados con Pol γ. Si bien muchos homólogos de Pol θ, codificados por POLQgen, se encuentran en eucariotas, su función no se comprende claramente. La secuencia de aminoácidos en el extremo C es lo que clasifica a Pol θ como polimerasa de la familia A, aunque la tasa de error de Pol θ está más estrechamente relacionada con las polimerasas de la familia Y. Pol θ extiende los extremos del cebador que no coinciden y puede eludir sitios abásicos añadiendo un nucleótido. También tiene actividad desoxirribofosfodiesterasa (dRPasa) en el dominio de la polimerasa y puede mostrar actividad ATPasa en estrecha proximidad al ssDNA. Pol ν (nu) se considera la menos eficaz de las enzimas polimerasas. Sin embargo, la ADN polimerasa nu juega un papel activo en la reparación de la homología durante las respuestas celulares a los enlaces cruzados.

Transcriptasa inversa (RT)

Es una ADN polimerasa dependiente de ARN (RdDp) que sintetiza ADN a partir de una plantilla de ARN. La familia de la transcriptasa inversa contiene tanto la funcionalidad de la ADN polimerasa como la funcionalidad de la ARNasa H, que degrada el ARN emparejado con el ADN. La transcriptasa inversa se emplea comúnmente en la amplificación de ARN con fines de investigación. Usando una plantilla de ARN, la PCR puede utilizar la transcriptasa inversa, creando una plantilla de ADN. Esta nueva plantilla de ADN se puede utilizar para una amplificación típica por PCR. Los productos de tal experimento son, por tanto, productos de PCR amplificados a partir de ARN.

La transcripción inversa se acompaña de un cambio de plantilla entre las dos copias del genoma (recombinación por elección de copia). De 5 a 14 eventos de recombinación por genoma ocurren en cada ciclo de replicación. El cambio de plantilla (recombinación) parece ser necesario para mantener la integridad del genoma y como un mecanismo de reparación para salvar los genomas dañados.

Telomerasa

La telomerasa es una enzima que funciona para replicar los extremos de los cromosomas lineales, ya que la ADN polimerasa normal no puede replicar los extremos o los telómeros. El saliente 3 'monocatenario del cromosoma bicatenario con la secuencia 5'-TTAGGG-3' recluta telomerasa. La telomerasa actúa como otras ADN polimerasas al extender el extremo 3 ', pero, a diferencia de otras ADN polimerasas, la telomerasa no requiere una plantilla. La subunidad TERT, un ejemplo de transcriptasa inversa, utiliza la subunidad de ARN para formar la unión cebador-molde que permite que la telomerasa extienda el extremo 3 'de los extremos del cromosoma. Se cree que la disminución gradual del tamaño de los telómeros como resultado de muchas replicaciones a lo largo de la vida está asociada con los efectos del envejecimiento.

ADN polimerasas virales

Los virus de ADN sintetizan una gran variedad de ADN polimerasas, que en su mayoría no están emparentadas con las ADN polimerasas celulares o con las de otros virus de ADN. Los virus retrotranscritos como el VIH se caracterizan por sintetizar transcriptasas inversas, las cuales si están emparentadas entre sí y también con las transcriptasas inversas celulares en especial con las eucariotas.

El fago Φ29 sintetiza una ADN polimerasa propia. Esta enzima es muy utilizada en biología molecular para múltiples procedimientos de desplazamiento de amplificación de ADN, y tiene una serie de características que la hacen particularmente adecuada para esta aplicación.

Referencias

  1. Hübscher, Ulrich. (2010). DNA polymerases : discovery, characterization, and functions in cellular DNA transactions. World Scientific. ISBN 978-981-4299-17-6. OCLC 670430601. Consultado el 31 de enero de 2021. 
  2. Camps, Manel; Loeb, Lawrence A. (2004-02). «When Pol I Goes into High Gear: Processive DNA Synthesis by Pol I in the Cell». Cell Cycle (en inglés) 3 (2): 114-116. ISSN 1538-4101. doi:10.4161/cc.3.2.651. Consultado el 31 de enero de 2021. 
  3. Chien, A.; Edgar, D. B.; Trela, J. M. (1 de septiembre de 1976). «Deoxyribonucleic acid polymerase from the extreme thermophile Thermus aquaticus.». Journal of Bacteriology (en inglés) 127 (3): 1550-1557. ISSN 0021-9193. PMID 8432. doi:10.1128/jb.127.3.1550-1557.1976. Consultado el 31 de enero de 2021. 
  4. Banach‐Orlowska, Magdalena; Fijalkowska, Iwona J.; Schaaper, Roel M.; Jonczyk, Piotr (2005). «DNA polymerase II as a fidelity factor in chromosomal DNA synthesis in Escherichia coli». Molecular Microbiology (en inglés) 58 (1): 61-70. ISSN 1365-2958. doi:10.1111/j.1365-2958.2005.04805.x. Consultado el 31 de enero de 2021. 
  5. Olson, Matthew W.; Dallmann, H. Garry; McHenry, Charles S. (1995-12). «DnaX Complex of Escherichia coli DNA Polymerase III Holoenzyme THE χ·ψ». Journal of Biological Chemistry 270 (49): 29570-29577. ISSN 0021-9258. doi:10.1074/jbc.270.49.29570. Consultado el 31 de enero de 2021. 
  6. Banach‐Orlowska, Magdalena; Fijalkowska, Iwona J.; Schaaper, Roel M.; Jonczyk, Piotr (2005). «DNA polymerase II as a fidelity factor in chromosomal DNA synthesis in Escherichia coli». Molecular Microbiology (en inglés) 58 (1): 61-70. ISSN 1365-2958. doi:10.1111/j.1365-2958.2005.04805.x. Consultado el 31 de enero de 2021. 
  7. Liao, Yi; Li, Yilai; Schroeder, Jeremy W.; Simmons, Lyle A.; Biteen, Julie S. (20 de diciembre de 2016). «Single-Molecule DNA Polymerase Dynamics at a Bacterial Replisome in Live Cells». Biophysical Journal (en inglés) 111 (12): 2562-2569. ISSN 0006-3495. PMID 28002733. doi:10.1016/j.bpj.2016.11.006. Consultado el 31 de enero de 2021. 
  8. «Bacterial replisomes». Current Opinion in Structural Biology (en inglés) 53: 159-168. 1 de diciembre de 2018. ISSN 0959-440X. doi:10.1016/j.sbi.2018.09.006. Consultado el 31 de enero de 2021. 
  9. Goodman, Myron F. (1 de junio de 2002). «Error-Prone Repair DNA Polymerases in Prokaryotes and Eukaryotes». Annual Review of Biochemistry 71 (1): 17-50. ISSN 0066-4154. doi:10.1146/annurev.biochem.71.083101.124707. Consultado el 31 de enero de 2021. 
  10. Mori, Tetsuya; Nakamura, Tatsuro; Okazaki, Naoto; Furukohri, Asako; Maki, Hisaji; Akiyama, Masahiro Tatsumi (2012). «Escherichia coli DinB inhibits replication fork progression without significantly inducing the SOS response». Genes ^|^ Genetic Systems 87 (2): 75-87. ISSN 1341-7568. doi:10.1266/ggs.87.75. Consultado el 31 de enero de 2021. 
  11. Jarosz, Daniel F.; Godoy, Veronica G.; Walker, Graham C. (1 de abril de 2007). «Proficient and Accurate Bypass of Persistent DNA Lesions by DinB DNA Polymerases». Cell Cycle 6 (7): 817-822. ISSN 1538-4101. PMID 17377496. doi:10.4161/cc.6.7.4065. Consultado el 31 de enero de 2021. 
  12. Patel, Meghna; Jiang, Qingfei; Woodgate, Roger; Cox, Michael M.; Goodman, Myron F. (1 de junio de 2010). «A new model for SOS-induced mutagenesis: how RecA protein activates DNA polymerase V». Critical Reviews in Biochemistry and Molecular Biology 45 (3): 171-184. ISSN 1040-9238. PMID 20441441. doi:10.3109/10409238.2010.480968. Consultado el 31 de enero de 2021. 
  13. Sutton, Mark D.; Walker, Graham C. (17 de julio de 2001). «Managing DNA polymerases: Coordinating DNA replication, DNA repair, and DNA recombination». Proceedings of the National Academy of Sciences (en inglés) 98 (15): 8342-8349. ISSN 0027-8424. PMID 11459973. doi:10.1073/pnas.111036998. Consultado el 31 de enero de 2021. 
  14. Raychaudhury, Paromita; Basu, Ashis K. (29 de marzo de 2011). «Genetic Requirement for Mutagenesis of the G[8,5-Me]T Cross-Link in Escherichia coli: DNA Polymerases IV and V Compete for Error-Prone Bypass». Biochemistry 50 (12): 2330-2338. ISSN 0006-2960. PMID 21302943. doi:10.1021/bi102064z. Consultado el 31 de enero de 2021. 
  15. Ishino, Yoshizumi; Komori, Kayoko; Cann, Isaac K. O.; Koga, Yosuke (15 de abril de 1998). «A Novel DNA Polymerase Family Found inArchaea». Journal of Bacteriology (en inglés) 180 (8): 2232-2236. ISSN 0021-9193. PMID 9555910. doi:10.1128/JB.180.8.2232-2236.1998. Consultado el 31 de enero de 2021. 
  16. Koonin, Eugene V.; Krupovic, Mart; Ishino, Sonoko; Ishino, Yoshizumi (9 de junio de 2020). «The replication machinery of LUCA: common origin of DNA replication and transcription». BMC Biology 18 (1): 61. ISSN 1741-7007. PMID 32517760. doi:10.1186/s12915-020-00800-9. Consultado el 31 de enero de 2021. 
  17. Yamtich, Jennifer; Sweasy, Joann B. (1 de mayo de 2010). «DNA polymerase Family X: Function, structure, and cellular roles». Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Proteins and Proteomics. DNA Polymerase: Structure and Function (en inglés) 1804 (5): 1136-1150. ISSN 1570-9639. PMID 19631767. doi:10.1016/j.bbapap.2009.07.008. Consultado el 31 de enero de 2021. 

Bibliografía

«La Replicación».

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polimerasa, este, artículo, sección, necesita, referencias, aparezcan, publicación, acreditada, este, aviso, puesto, febrero, 2020, enzimas, celulares, virales, intervienen, proceso, replicación, llevan, cabo, síntesis, nueva, cadena, emparejando, desoxirribon. Este articulo o seccion necesita referencias que aparezcan en una publicacion acreditada Este aviso fue puesto el 26 de febrero de 2020 Las ADN polimerasas son enzimas celulares o virales que intervienen en el proceso de replicacion del ADN Llevan a cabo la sintesis de la nueva cadena de ADN emparejando los desoxirribonucleotidos trifosfato dNTP con los desoxirribonucleotidos complementarios correspondientes del ADN molde Los dNTP que se usan en la replicacion del ADN contienen tres fosfatos unidos al grupo hidroxilo 5 de la desoxirribosa y dependiendo de la base nitrogenada seran dATP dTTP dCTP o dGTP La reaccion fundamental es una transferencia de un grupo fosfato en la que el grupo 3 OH actua como nucleofilo en el extremo 3 de la cadena que esta en crecimiento El ataque nucleofilico se produce sobre el fosfato a el mas proximo a la desoxirribosa del desoxirribonucleosido 5 trifosfato que entra liberandose pirofosfato inorganico y alargandose el ADN al formarse un nuevo enlace fosfodiester A diferencia de la mayoria de procesos biologicos que ocurren en la celula en los que solo se separa un grupo fosfato Pi durante la replicacion se separan los dos ultimos grupos fosfato en forma de grupo pirofosfato PPi ADN polimerasa ADN dirigidaEstructura tridimensional de los motivos helice giro helice de union al ADN de una ADN polimerasa beta humana basada en el archivo PDB 7ICG Estructuras disponiblesPDB Estructuras enzimaticasRCSB PDB PDBe PDBsumIdentificadoresIdentificadoresexternos Bases de datos de enzimasIntEnz entrada en IntEnz BRENDA entrada en BRENDA ExPASy NiceZime view KEGG entrada en KEEG PRIAM perfil PRIAM ExplorEnz entrada en ExplorEnz MetaCyc via metabolicaNumero EC2 7 7 7Numero CAS9012 90 2 Ontologia genicaActividad enzimaticaAmiGO EGOOrtologosEspeciesHumano RatonPubMed Busqueda 1 PMC Busqueda 2 vte editar datos en Wikidata Este proceso se puede resumir en una ecuacion quimica DNA n dNTP DNA n 1 PPi A pesar de que la ADN polimerasa solo tiene un sitio activo para emparejar los cuatro dNTPs diferentes la union correcta de los pares de bases A T C G es posible basandose en la geometria de estos si la union es incorrecta se produce un desplazamiento del fosfato a haciendo mas dificil su union al extremo 3 OH y ralentizando asi el ritmo de catalisis lo que da lugar a que la ADN polimerasa anada preferentemente las bases correctas Las ADN polimerasas pueden anadir hasta 1000 nucleotidos por segundo Esto es debido a su naturaleza es decir el numero de nucleotidos que son capaces de anadir cada vez que se asocian al molde de ADN que van a copiar Dado que la adicion de los nucleotidos es un proceso que dura unos milisegundos la velocidad de catalisis va a depender del tiempo que la ADN polimerasa permanece unida al ADN esto es de su procesividad Funcion correctora exonucleasa 3 5 de las ADN polimerasas El crecimiento de la cadena se produce en direccion 5 3 ya que se requiere de un grupo 3 OH libre para el inicio de la sintesis puesto que este es el que realiza el ataque nucleofilico sobre el fosfato a del dNTP de forma que las ADN polimerasas requieren de un iniciador 3 OH que puede ser de ADN o ARN llamado cebador que es sintetizado por la ARN primasa El extremo 3 del cebador se denomina extremo cebador Las ADN polimerasas tambien realizan otras funciones durante el proceso de replicacion Ademas de participar en la elongacion desempenan una funcion correctora y reparadora gracias a su actividad exonucleasa 3 que les confiere la capacidad de degradar el ADN partiendo de un extremo de este Es importante que existan estos mecanismos de correccion ya que de lo contrario los errores producidos durante la copia del ADN darian lugar a mutaciones Indice 1 Funciones 1 1 Estructura 1 2 Procesividad 2 Reaccion en cadena de la polimerasa 3 Familias de ADN polimerasas 4 ADN polimerasas procariotas 4 1 Pol I 4 2 Pol II 4 3 Pol III 4 4 Pol IV 4 5 Pol V 4 6 Familia D 4 7 Transcriptasa inversa RT 5 ADN polimerasa en eucariotas 5 1 Polimerasas b l s m beta lambda sigma mu y TdT 5 2 Polimerasas a d y e alfa delta y epsilon 5 3 Polimerasas h i y k eta iota y kappa 5 4 Polimerasas Rev1 y z zeta 5 5 Polimerasas g 8 y n gamma theta y nu 5 6 Transcriptasa inversa RT 5 7 Telomerasa 6 ADN polimerasas virales 7 Referencias 8 BibliografiaFunciones EditarLas ADN polimerasas pueden agregar nucleotidos libres solo al extremo 3 de la cadena de ADN en formacion Esto provoca que el alargamiento de la cadena en formacion se realice en la direccion 5 3 Ninguna ADN polimerasa conocida puede iniciar una hebra de ADN nuevamente es decir no puede colocar el primer nucleotido en la hebra luego de unir el segundo luego el tercero y asi sucesivamente Todo lo que pueden hacer es alargar una cadena existente por su extremo 3 OH por lo que siempre debe haber un fragmento inicial ya formado Esta es la razon por la que la ADN polimerasa necesita un cebador pre formado al que agregar nucleotidos Los cebadores pueden estar formados por ARN o ADN En la replicacion del ADN las dos primeras bases son siempre ARN y son sintetizadas por otra enzima llamada primasa Tambien se requiere una enzima llamada helicasa para desenredar el ADN y deshacer en esa region su estructura de doble hebra y formar la estructura de dos hebras simples bifurcadas esta region es la horquilla de replicacion lo que facilita la replicacion de cada una de las hebras siguiendo el modelo semiconservador de replicacion del ADN Otra propiedad que tienen algunas ADN polimerasas pero no todas es la correccion de errores Este proceso corrige los errores producidos durante la formacion del ADN neosintetizado Cuando se reconoce un par de bases incorrectamente colocado la ADN polimerasa invierte la direccion de su movimiento al retrasar un par de bases Esta actividad exonucleasa 3 5 de la enzima permite eliminar el par de bases incorrecto para luego ser reemplazado por el correcto la propia polimerasa que continuara la replicacion Esta actividad se llama correccion de pruebas Las ADN polimerasas se utilizan ampliamente en experimentos de biologia molecular Las ADN polimerasas tienen una estructura muy conservada lo que significa que sus subunidades cataliticas varian muy poco de una especie a otra Las estructuras conservadas generalmente realizan funciones importantes e insustituibles en la celula cuyo mantenimiento produce una serie de ventajas Estructura Editar Las ADN polimerasas conocidas tienen una estructura muy conservada lo que significa que sus subunidades cataliticas generales varian muy poco de una especie a otra independientemente de sus estructuras de dominio Las estructuras conservadas suelen indicar funciones importantes e insustituibles de la celula cuyo mantenimiento proporciona ventajas evolutivas La forma se puede describir como una mano derecha con dominios de pulgar dedo y palma El dominio de la palma parece funcionar catalizando la transferencia de grupos fosforilo en la reaccion de transferencia de fosforilo El ADN se une a la palma cuando la enzima esta activa Se cree que esta reaccion esta catalizada por un mecanismo de iones de dos metales El dominio de los dedos funciona para unir los nucleosidos trifosfatos con la base de la plantilla El dominio del pulgar juega un papel potencial en la procesividad la translocacion y el posicionamiento del ADN Procesividad Editar La rapida catalisis de la ADN polimerasa se debe a su naturaleza procesiva La procesividad es una caracteristica de las enzimas que funcionan sobre sustratos polimericos En el caso de la ADN polimerasa el grado de procesividad se refiere al numero medio de nucleotidos anadidos cada vez que la enzima se une a una plantilla La ADN polimerasa promedio requiere aproximadamente un segundo para localizar y unir una union cebador molde Una vez que se une una ADN polimerasa no procesadora agrega nucleotidos a una velocidad de un nucleotido por segundo Sin embargo las ADN polimerasas procesivas agregan multiples nucleotidos por segundo lo que aumenta drasticamente la velocidad de sintesis de ADN El grado de procesividad es directamente proporcional a la tasa de sintesis de ADN La tasa de sintesis de ADN en una celula viva se determino primero como la tasa de elongacion del ADN del fago T4 en bacterias infectadas con bacteriofagos Durante el periodo de aumento exponencial del ADN a 37 C la tasa fue de 749 nucleotidos por segundo La capacidad de la ADN polimerasa para deslizarse a lo largo de la plantilla de ADN permite una mayor procesividad Hay un aumento dramatico en la procesividad en la bifurcacion de replicacion Este aumento se ve facilitado por la asociacion de la ADN polimerasa con proteinas conocidas como abrazadera deslizante de ADN Las pinzas son multiples subunidades de proteinas asociadas en forma de anillo Utilizando la hidrolisis de ATP una clase de proteinas conocidas como proteinas de carga de abrazadera deslizante abren la estructura de anillo de las abrazaderas deslizantes de ADN permitiendo la union y liberacion de la hebra de ADN Interaccion proteina proteinacon la pinza evita que la ADN polimerasa se difunda desde la plantilla de ADN lo que garantiza que la enzima se una a la misma union cebador plantilla y continue la replicacion La ADN polimerasa cambia de conformacion aumentando la afinidad por la pinza cuando se asocia con ella y disminuyendo la afinidad cuando completa la replicacion de un tramo de ADN para permitir la liberacion de la pinza Reaccion en cadena de la polimerasa EditarArticulo principal Reaccion en cadena de la polimerasa La propiedad de las ADN polimerasas para replicar hebras de ADN se utiliza para la reaccion en cadena de la polimerasa conocida como PCR por sus siglas en ingles para obtener un gran numero de copias de un fragmento de ADN particular amplificandolo para propositos de investigacion En los procesos de PCR se requiere la utilizacion de polimerasas termoestables como la polimerasa Taq debido a que es necesario aplicar altas temperaturas para desnaturalizar la molecula de ADN Familias de ADN polimerasas EditarSegun la homologia de su estructura y la secuencia de aminoacidos las ADN polimerasas se pueden clasificar en 6 familias Las ADN polimerasas de los virus de ADN son dificiles de clasificar en los siguientes grupos debido a la alta divergencia de las secuencias virales Familia A Incluye las ADN polimerasas eucariotas g 8 n la procariota I y la viral T7 Familia B Incluye las ADN polimerasas eucariotas z a d e y la procariotas II Tambien se ha propuesto la inclusion de algunas ADN polimerasas virales Familia D Incluye la ADN polimerasa procariota D y tambien se ha propuesto la inclusion de algunas ADN polimerasas virales Familia X Incluye las ADN polimerasas eucariotas b s l m TDT y la procariota III Familia Y Incluye las ADN polimerasas eucariotas i k h y las procariotas IV y V Familia RT Incluye la telomerasa exclusiva de los eucariotas y las transcriptasas inversas virales eucariotas y procariotas ADN polimerasas procariotas Editar Holoenzima ADN Pol III de E coli Actividad correctora exonucleasa 3 5 de la subunidad e de la holoenzima ADN Pol III Las ADN polimerasas de los procariotas arqueas y bacterias son las Pol I II III IV V B D y la RT cada una de ellas esta especializada en una o mas de estas funciones segun cual sea su papel en la replicacion Las polimerasas procarioticas existen en dos formas polimerasa central y holoenzima La polimerasa central sintetiza ADN a partir de la plantilla de ADN pero no puede iniciar la sintesis sola o con precision La holoenzima inicia la sintesis con precision Pol I Editar Las polimerasas procariotas de la familia A incluyen la enzima ADN polimerasa I Pol I que esta codificada por el gen polA y es ubicua entre los procariotas Esta polimerasa reparadora participa en la reparacion por escision con actividad exonucleasa 3 5 y 5 3 y en el procesamiento de fragmentos de Okazaki generados durante la sintesis de la hebra retrasada 1 Pol I es la polimerasa mas abundante y representa gt 95 de la actividad polimerasa en E coli sin embargo se han encontrado celulas que carecen de Pol I lo que sugiere que la actividad de Pol I puede ser reemplazada por las otras cuatro polimerasas Pol I agrega 15 20 nucleotidos por segundo mostrando asi una pobre procesividad En cambio Pol I comienza a agregar nucleotidos en el cebador de ARN union de plantilla conocida como el origen de replicacion ori Aproximadamente 400 pb aguas abajo del origen la holoenzima Pol III se ensambla y se hace cargo de la replicacion a una velocidad y naturaleza altamente procesivas 2 La polimerasa Taq es una enzima termoestable de esta familia que carece de capacidad de correccion de pruebas 3 Pol II Editar La ADN polimerasa II es una polimerasa de la familia B codificada por el gen polB Pol II tiene actividad de exonucleasa 3 5 y participa en la reparacion del ADN el reinicio de la replicacion para evitar lesiones y su presencia celular puede pasar de 30 50 copias por celula a 200 300 durante la induccion de SOS Tambien se cree que Pol II es una copia de seguridad de Pol III ya que puede interactuar con proteinas holoenzimaticas y asumir un alto nivel de procesividad Se cree que el papel principal de Pol II es la capacidad de dirigir la actividad de la polimerasa en la bifurcacion de replicacion y ayudo a detener los desajustes terminales de derivacion de Pol III 4 Pol III Editar La holoenzima de la ADN polimerasa III es la enzima principal involucrada en la replicacion del ADN en los procariotas y pertenece a la familia de las polimerasas C Consta de tres conjuntos el nucleo pol III el factor de procesividad de la abrazadera deslizante beta y el complejo de carga de la abrazadera El nucleo consta de tres subunidades a el centro de actividad de la polimerasa ɛ corrector de pruebas exonucleolitico y 8 que puede actuar como estabilizador para ɛ El factor de procesividad de la abrazadera deslizante beta tambien esta presente por duplicado uno para cada nucleo para crear una abrazadera que encierra el ADN lo que permite una alta procesividad 5 El tercer conjunto es un complejo cargador de pinzas de siete subunidades t2gdd xps El viejo modelo de trombon de los libros de texto describe un complejo de alargamiento con dos equivalentes de la enzima central en cada horquilla de replicacion RF uno para cada hebra el rezagado y el adelantado 6 Sin embargo la evidencia reciente de estudios de una sola molecula indica un promedio de tres equivalentes estequiometricos de enzima central en cada RF tanto para Pol III como para su contraparte en B subtilis PolC 7 La microscopia fluorescente en la celula ha revelado que la sintesis de la cadena principal puede no ser completamente continua y Pol III es decir las subunidades a e t d y x de la holoenzima sin la abrazadera deslizante ss2 tiene una alta frecuencia de disociacion de los RF activos 8 En estos estudios la tasa de rotacion de la horquilla de replicacion fue de aproximadamente 10 s para Pol III 47 s para la pinza deslizante ss2 y 15 m para la helicasa DnaB Esto sugiere que la helicasa DnaB puede permanecer asociada de manera estable en los RF y servir como un punto de nucleacion para la holoenzima competente Los estudios in vitro de una sola molecula han demostrado que Pol III tiene una alta tasa de renovacion de RF cuando esta en exceso pero permanece asociada de manera estable con horquillas de replicacion cuando la concentracion es limitante 8 Otro estudio de una sola molecula mostro que la actividad de la helicasa de ADNB y el alargamiento de la hebra pueden proceder con una cinetica estocastica desacoplada 8 Pol IV Editar La ADN polimerasa IV Pol IV es una ADN polimerasa propensa a errores que participa en mutagenesis no dirigida 9 Pol IV es una polimerasa de la familia Y expresada por el gen dinB que se activa mediante la induccion de SOS causada por polimerasas estancadas en la bifurcacion de replicacion Durante la induccion de SOS la produccion de Pol IV se multiplica por diez y una de las funciones durante este tiempo es interferir con la procesividad de la holoenzima Pol III Esto crea un punto de control detiene la replicacion y da tiempo para reparar las lesiones del ADN a traves de la via de reparacion adecuada 10 Otra funcion de Pol IV es realizar la sintesis de translesiones en la bifurcacion de replicacion estancada como por ejemplo eludir los aductos de N2 desoxiguanina a un ritmo mas rapido que atravesar el ADN no danado Las celulas que carecen del gen dinB tienen una mayor tasa de mutagenesis causada por agentes que danan el ADN 11 Pol V Editar La ADN polimerasa V Pol V es una ADN polimerasa de la familia Y que participa en la respuesta SOS y en los mecanismos de reparacion del ADN de la sintesis de translesion 12 La transcripcion de Pol V a traves de los genes umuDC esta altamente regulada para producir solo Pol V cuando el ADN danado esta presente en la celula y genera una respuesta SOS Las polimerasas estancadas hacen que RecA se una al ssDNA lo que hace que la proteina LexA se digiera automaticamente LexA pierde entonces su capacidad para reprimir la transcripcion del operon umuDC La misma nucleoproteina RecA ssDNA modifica postraduccionalmente la proteina UmuD en proteina UmuD UmuD y UmuD forman un heterodimero que interactua con UmuC que a su vez activa la actividad catalitica de la polimerasa de umuC en el ADN danado 13 Se ha propuesto un modelo de cinturon de herramientas de polimerasa para cambiar la pol III por la pol IV en una horquilla de replicacion detenida donde ambas polimerasas se unen simultaneamente a la pinza b 14 Sin embargo la participacion de mas de una polimerasa TLS trabajando en sucesion para evitar una lesion aun no se ha demostrado en E coli Ademas Pol IV puede catalizar tanto la insercion como la extension con alta eficiencia mientras que pol V se considera la principal polimerasa SOS TLS Un ejemplo es la derivacion del entrecruzamiento de guanina timina intracatenaria donde se demostro basandose en la diferencia en las firmas mutacionales de las dos polimerasas que pol IV y pol V compiten por TLS del entrecruzamiento intracatenario 14 Familia D Editar En 1998 se descubrio la familia D de ADN polimerasas 15 El complejo PolD es un heterodimero de dos cadenas cada una codificada por DP1 correccion pequena y DP2 catalitico grande A diferencia de otras ADN polimerasas la estructura y el mecanismo del nucleo catalitico DP2 se parecen a los de las ARN polimerasas de multiples subunidades La interfaz DP1 DP2 se parece a la del dedo de zinc de polimerasa eucariota de clase B y su pequena subunidad DP1 una exonucleasa similar a Mre11 es probablemente el precursor de una pequena subunidad de Pol a y e proporcionando capacidades de correccion de pruebas ahora perdidas en eucariotas Su dominio HSH N terminal es similar a las proteinas AAA especialmente la subunidad d y RuvB de Pol III en estructura DP2 tiene un dominio KH de clase II PolD es mas estable al calor y mas preciso que la polimerasa Taq pero aun no se ha comercializado Se ha sugerido que la ADN polimerasa de la familia D fue la primera en evolucionar en organismos celulares y que la polimerasa replicativa del ultimo antepasado comun universal LUCA pertenecia a la familia D 16 Transcriptasa inversa RT Editar Es una ADN polimerasa dependiente de ARN RdDp que sintetiza ADN a partir de una plantilla de ARN La familia de la transcriptasa inversa contiene tanto la funcionalidad de la ADN polimerasa como la funcionalidad de la ARNasa H que degrada el ARN emparejado con el ADN La transcriptasa inversa se emplea comunmente en la amplificacion de ARN con fines de investigacion Usando una plantilla de ARN la PCR puede utilizar la transcriptasa inversa creando una plantilla de ADN Esta nueva plantilla de ADN se puede utilizar para una amplificacion tipica por PCR Los productos de tal experimento son por tanto productos de PCR amplificados a partir de ARN La transcripcion inversa se acompana de un cambio de plantilla entre las dos copias del genoma recombinacion por eleccion de copia De 5 a 14 eventos de recombinacion por genoma ocurren en cada ciclo de replicacion El cambio de plantilla recombinacion parece ser necesario para mantener la integridad del genoma y como un mecanismo de reparacion para salvar los genomas danadosADN polimerasa en eucariotas EditarHay varios tipos de ADN polimerasa en los eucariotas son las Pol z a d g 8 n e b s l m i k h TDT y la RT La primasa que es parte de la molecula de ADN polimerasa a sintetiza cebadores de ARN y ademas comienza la elongacion con ADN de las dos cadenas Despues se produce un cambio de polimerasa y entra la ADN polimerasa s que continua la sintesis Polimerasas b l s m beta lambda sigma mu y TdT Editar Las polimerasas de la familia X contienen la polimerasa eucariota pol b beta bien conocida asi como otras polimerasas eucariotas como Pol s sigma Pol l lambda Pol m mu y desoxinucleotidil transferasa terminal TdT Las polimerasas de la familia X se encuentran principalmente en vertebrados y algunas se encuentran en plantas y hongos Estas polimerasas tienen regiones altamente conservadas que incluyen dos motivos helice horquilla helice que son imperativos en las interacciones ADN polimerasa Un motivo esta ubicado en el dominio de 8 kDa que interactua con el ADN corriente abajo y un motivo esta ubicado en el dominio del pulgar que interactua con la cadena del cebador Pol b codificado por el gen POLB es necesario para la reparacion por escision de base de parche corto una via de reparacion del ADN que es esencial para reparar bases alquiladas u oxidadas asi como sitios abasicos Pol l y Pol m codificados por los genes POLL y POLM respectivamente estan involucrados en la union de extremos no homologos un mecanismo para volver a unir las roturas de doble cadena del ADN debido al peroxido de hidrogeno y la radiacion ionizante respectivamente TdT se expresa solo en tejido linfoide y anade n nucleotidos a las roturas de doble hebra formadas durante la recombinacion V D J para promover la diversidad inmunologica 17 Polimerasas a d y e alfa delta y epsilon Editar Pol a alfa Pol d delta y Pol e epsilon son miembros de las polimerasas de la familia B y son las principales polimerasas implicadas en la replicacion del ADN nuclear El complejo Pol a complejo pol a ADN primasa consta de cuatro subunidades la subunidad catalitica POLA1 la subunidad reguladora POLA2 y las subunidades primasa pequena y grande PRIM1 y PRIM2 respectivamente Una vez que la primasa ha creado el cebador de ARN Pol a comienza la replicacion alargando el cebador con 20 nucleotidos Debido a su alta procesividad Pol d se hace cargo de la sintesis de las cadenas principales y retrasadas de Pol a Pol d se expresa mediante los genes POLD1 creando la subunidad catalitica POLD2 POLD3 y POLD4 creando las otras subunidades que interactuan con el antigeno nuclear de celulas proliferantes PCNA que es una abrazadera de ADN que permite que Pol d posea procesividad Pol e esta codificado por el gen POLE1 la subunidad catalitica POLE2 y POLE3 Se ha informado que la funcion de Pol e es extender la cadena principal durante la replicacion mientras que Pol d replica principalmente la hebra rezagada sin embargo evidencia reciente sugirio que Pol d tambien podria tener un papel en la replicacion de la cadena principal de ADN La region C terminal de Pol e reliquia de la polimerasa a pesar de ser innecesaria para la actividad de la polimerasa se cree que es esencial para la vitalidad celular Se cree que la region C terminal proporciona un punto de control antes de entrar en anafase proporciona estabilidad a la holoenzima y agrega proteinas a la holoenzima necesarias para el inicio de la replicacion Pol e tiene un dominio palma mas grande que proporciona alta procesividad independientemente del PCNA En comparacion con otras polimerasas de la familia B la familia de exonucleasas DEDD responsable de la correccion de pruebas esta inactivada en Pol a Pol e es unico en el sentido de que tiene dos dominios con dedos de zinc y una copia inactiva de otra polimerasa de la familia B en su C terminal La presencia de este dedo de zinc tiene implicaciones en los origenes de Eukaryota que en este caso se coloca en el grupo Asgard con polimerasa arqueal B3 Polimerasas h i y k eta iota y kappa Editar Pol h eta Pol i iota y Pol k kappa son ADN polimerasas de la familia Y implicadas en la reparacion del ADN por sintesis de translesion y codificadas por los genes POLH POLI y POLK respectivamente Los miembros de la Familia Y tienen cinco motivos comunes para ayudar a unir el sustrato y el extremo del cebador y todos incluyen los dominios tipicos del pulgar la palma y el dedo de la mano derecha con dominios agregados como el dedo menique LF el dominio asociado a la polimerasa PAD o muneca El sitio activo sin embargo difiere entre los miembros de la familia debido a las diferentes lesiones que se reparan Las polimerasas de la familia Y son polimerasas de baja fidelidad pero se ha demostrado que hacen mas bien que mal ya que las mutaciones que afectan a la polimerasa pueden causar diversas enfermedades como cancer de piel y la variante de Xeroderma Pigmentosum XPS La importancia de estas polimerasas se evidencia por el hecho de que el gen que codifica la ADN polimerasa h se conoce como XPV porque la perdida de este gen da como resultado la variante Xeroderma Pigmentosum de la enfermedad Pol h es particularmente importante para permitir una sintesis de translesion precisa del dano del ADN resultante de la radiacion ultravioleta La funcionalidad de Pol k no se comprende completamente pero los investigadores han encontrado dos funciones probables Se cree que Pol k actua como un extensor o un insertador de una base especifica en ciertas lesiones del ADN Las tres polimerasas de sintesis de translesiones junto con Rev1 se reclutan en las lesiones danadas a traves de ADN polimerasas replicativas estancadas Hay dos vias de reparacion de danos que llevan a los investigadores a concluir que la via elegida depende de que hebra contiene el dano la hebra principal o la rezagada Polimerasas Rev1 y z zeta Editar La Pol z otra polimerasa de la familia B esta formada por dos subunidades Rev3 la subunidad catalitica y Rev7 MAD2L2 que aumenta la funcion catalitica de la polimerasa y participa en la sintesis de translesiones Pol z carece de actividad exonucleasa 3 a 5 es unico porque puede extender cebadores con desajustes terminales Rev1 tiene tres regiones de interes en el dominio BRCT dominio de union a ubiquitina y dominio C terminal y tiene capacidad de transferasa de dCMP que agrega lesiones opuestas de desoxicitidina que detendrian las polimerasas replicativas Pol d y Pol e Estas polimerasas estancadas activan complejos de ubiquitina que a su vez disocian las polimerasas de replicacion y reclutan Pol z y Rev1 Juntos Pol z y Rev1 anaden desoxicitidina y Pol z se extiende mas alla de la lesion A traves de un proceso aun indeterminado Pol z se disocia y las polimerasas de replicacion se reasocian y continuan la replicacion Pol z y Rev1 no son necesarios para la replicacion pero la perdida del gen REV3 en la levadura en gemacion puede causar una mayor sensibilidad a los agentes que danan el ADN debido al colapso de las horquillas de replicacion donde las polimerasas de replicacion se han estancado Polimerasas g 8 y n gamma theta y nu Editar Pol g gamma Pol 8 theta y Pol n nu son polimerasas de la familia A Durante mucho tiempo se penso que Pol g codificada por el gen POLG era la unica polimerasa mitocondrial Sin embargo investigaciones recientes muestran que al menos Pol b beta una polimerasa de la Familia X tambien esta presente en las mitocondrias Cualquier mutacion que produzca una Pol g limitada o que no funcione tiene un efecto significativo sobre el ADNmt y es la causa mas comun de trastornos mitocondriales hereditarios autosomicos Pol g contiene un dominio de polimerasa C terminal y un dominio de exonucleasa N terminal 3 5 que estan conectados a traves de la region enlazadora que se une a la subunidad accesoria La subunidad accesoria se une al ADN y es necesaria para la procesividad de Pol g La mutacion puntual A467T en la region enlazadora es responsable de mas de un tercio de todos los trastornos mitocondriales asociados con Pol g Si bien muchos homologos de Pol 8 codificados por POLQgen se encuentran en eucariotas su funcion no se comprende claramente La secuencia de aminoacidos en el extremo C es lo que clasifica a Pol 8 como polimerasa de la familia A aunque la tasa de error de Pol 8 esta mas estrechamente relacionada con las polimerasas de la familia Y Pol 8 extiende los extremos del cebador que no coinciden y puede eludir sitios abasicos anadiendo un nucleotido Tambien tiene actividad desoxirribofosfodiesterasa dRPasa en el dominio de la polimerasa y puede mostrar actividad ATPasa en estrecha proximidad al ssDNA Pol n nu se considera la menos eficaz de las enzimas polimerasas Sin embargo la ADN polimerasa nu juega un papel activo en la reparacion de la homologia durante las respuestas celulares a los enlaces cruzados Transcriptasa inversa RT Editar Es una ADN polimerasa dependiente de ARN RdDp que sintetiza ADN a partir de una plantilla de ARN La familia de la transcriptasa inversa contiene tanto la funcionalidad de la ADN polimerasa como la funcionalidad de la ARNasa H que degrada el ARN emparejado con el ADN La transcriptasa inversa se emplea comunmente en la amplificacion de ARN con fines de investigacion Usando una plantilla de ARN la PCR puede utilizar la transcriptasa inversa creando una plantilla de ADN Esta nueva plantilla de ADN se puede utilizar para una amplificacion tipica por PCR Los productos de tal experimento son por tanto productos de PCR amplificados a partir de ARN La transcripcion inversa se acompana de un cambio de plantilla entre las dos copias del genoma recombinacion por eleccion de copia De 5 a 14 eventos de recombinacion por genoma ocurren en cada ciclo de replicacion El cambio de plantilla recombinacion parece ser necesario para mantener la integridad del genoma y como un mecanismo de reparacion para salvar los genomas danados Telomerasa Editar La telomerasa es una enzima que funciona para replicar los extremos de los cromosomas lineales ya que la ADN polimerasa normal no puede replicar los extremos o los telomeros El saliente 3 monocatenario del cromosoma bicatenario con la secuencia 5 TTAGGG 3 recluta telomerasa La telomerasa actua como otras ADN polimerasas al extender el extremo 3 pero a diferencia de otras ADN polimerasas la telomerasa no requiere una plantilla La subunidad TERT un ejemplo de transcriptasa inversa utiliza la subunidad de ARN para formar la union cebador molde que permite que la telomerasa extienda el extremo 3 de los extremos del cromosoma Se cree que la disminucion gradual del tamano de los telomeros como resultado de muchas replicaciones a lo largo de la vida esta asociada con los efectos del envejecimiento ADN polimerasas virales EditarLos virus de ADN sintetizan una gran variedad de ADN polimerasas que en su mayoria no estan emparentadas con las ADN polimerasas celulares o con las de otros virus de ADN Los virus retrotranscritos como el VIH se caracterizan por sintetizar transcriptasas inversas las cuales si estan emparentadas entre si y tambien con las transcriptasas inversas celulares en especial con las eucariotas El fago F29 sintetiza una ADN polimerasa propia Esta enzima es muy utilizada en biologia molecular para multiples procedimientos de desplazamiento de amplificacion de ADN y tiene una serie de caracteristicas que la hacen particularmente adecuada para esta aplicacion Referencias Editar Hubscher Ulrich 2010 DNA polymerases discovery characterization and functions in cellular DNA transactions World Scientific ISBN 978 981 4299 17 6 OCLC 670430601 Consultado el 31 de enero de 2021 Camps Manel Loeb Lawrence A 2004 02 When Pol I Goes into High Gear Processive DNA Synthesis by Pol I in the Cell Cell Cycle en ingles 3 2 114 116 ISSN 1538 4101 doi 10 4161 cc 3 2 651 Consultado el 31 de enero de 2021 Chien A Edgar D B Trela J M 1 de septiembre de 1976 Deoxyribonucleic acid polymerase from the extreme thermophile Thermus aquaticus Journal of Bacteriology en ingles 127 3 1550 1557 ISSN 0021 9193 PMID 8432 doi 10 1128 jb 127 3 1550 1557 1976 Consultado el 31 de enero de 2021 Banach Orlowska Magdalena Fijalkowska Iwona J Schaaper Roel M Jonczyk Piotr 2005 DNA polymerase II as a fidelity factor in chromosomal DNA synthesis in Escherichia coli Molecular Microbiology en ingles 58 1 61 70 ISSN 1365 2958 doi 10 1111 j 1365 2958 2005 04805 x Consultado el 31 de enero de 2021 Olson Matthew W Dallmann H Garry McHenry Charles S 1995 12 DnaX Complex of Escherichia coli DNA Polymerase III Holoenzyme THE x ps Journal of Biological Chemistry 270 49 29570 29577 ISSN 0021 9258 doi 10 1074 jbc 270 49 29570 Consultado el 31 de enero de 2021 Banach Orlowska Magdalena Fijalkowska Iwona J Schaaper Roel M Jonczyk Piotr 2005 DNA polymerase II as a fidelity factor in chromosomal DNA synthesis in Escherichia coli Molecular Microbiology en ingles 58 1 61 70 ISSN 1365 2958 doi 10 1111 j 1365 2958 2005 04805 x Consultado el 31 de enero de 2021 Liao Yi Li Yilai Schroeder Jeremy W Simmons Lyle A Biteen Julie S 20 de diciembre de 2016 Single Molecule DNA Polymerase Dynamics at a Bacterial Replisome in Live Cells Biophysical Journal en ingles 111 12 2562 2569 ISSN 0006 3495 PMID 28002733 doi 10 1016 j bpj 2016 11 006 Consultado el 31 de enero de 2021 a b c Bacterial replisomes Current Opinion in Structural Biology en ingles 53 159 168 1 de diciembre de 2018 ISSN 0959 440X doi 10 1016 j sbi 2018 09 006 Consultado el 31 de enero de 2021 Goodman Myron F 1 de junio de 2002 Error Prone Repair DNA Polymerases in Prokaryotes and Eukaryotes Annual Review of Biochemistry 71 1 17 50 ISSN 0066 4154 doi 10 1146 annurev biochem 71 083101 124707 Consultado el 31 de enero de 2021 Mori Tetsuya Nakamura Tatsuro Okazaki Naoto Furukohri Asako Maki Hisaji Akiyama Masahiro Tatsumi 2012 Escherichia coli DinB inhibits replication fork progression without significantly inducing the SOS response Genes Genetic Systems 87 2 75 87 ISSN 1341 7568 doi 10 1266 ggs 87 75 Consultado el 31 de enero de 2021 Jarosz Daniel F Godoy Veronica G Walker Graham C 1 de abril de 2007 Proficient and Accurate Bypass of Persistent DNA Lesions by DinB DNA Polymerases Cell Cycle 6 7 817 822 ISSN 1538 4101 PMID 17377496 doi 10 4161 cc 6 7 4065 Consultado el 31 de enero de 2021 Patel Meghna Jiang Qingfei Woodgate Roger Cox Michael M Goodman Myron F 1 de junio de 2010 A new model for SOS induced mutagenesis how RecA protein activates DNA polymerase V Critical Reviews in Biochemistry and Molecular Biology 45 3 171 184 ISSN 1040 9238 PMID 20441441 doi 10 3109 10409238 2010 480968 Consultado el 31 de enero de 2021 Sutton Mark D Walker Graham C 17 de julio de 2001 Managing DNA polymerases Coordinating DNA replication DNA repair and DNA recombination Proceedings of the National Academy of Sciences en ingles 98 15 8342 8349 ISSN 0027 8424 PMID 11459973 doi 10 1073 pnas 111036998 Consultado el 31 de enero de 2021 a b Raychaudhury Paromita Basu Ashis K 29 de marzo de 2011 Genetic Requirement for Mutagenesis of the G 8 5 Me T Cross Link in Escherichia coli DNA Polymerases IV and V Compete for Error Prone Bypass Biochemistry 50 12 2330 2338 ISSN 0006 2960 PMID 21302943 doi 10 1021 bi102064z Consultado el 31 de enero de 2021 Ishino Yoshizumi Komori Kayoko Cann Isaac K O Koga Yosuke 15 de abril de 1998 A Novel DNA Polymerase Family Found inArchaea Journal of Bacteriology en ingles 180 8 2232 2236 ISSN 0021 9193 PMID 9555910 doi 10 1128 JB 180 8 2232 2236 1998 Consultado el 31 de enero de 2021 Koonin Eugene V Krupovic Mart Ishino Sonoko Ishino Yoshizumi 9 de junio de 2020 The replication machinery of LUCA common origin of DNA replication and transcription BMC Biology 18 1 61 ISSN 1741 7007 PMID 32517760 doi 10 1186 s12915 020 00800 9 Consultado el 31 de enero de 2021 Yamtich Jennifer Sweasy Joann B 1 de mayo de 2010 DNA polymerase Family X Function structure and cellular roles Biochimica et Biophysica Acta BBA Proteins and Proteomics DNA Polymerase Structure and Function en ingles 1804 5 1136 1150 ISSN 1570 9639 PMID 19631767 doi 10 1016 j bbapap 2009 07 008 Consultado el 31 de enero de 2021 Bibliografia Editar La Replicacion Datos Q206286 Multimedia DNA polymerasesObtenido de https es wikipedia org w index php title ADN polimerasa amp oldid 135949890, wikipedia, wiki, leyendo, leer, libro, biblioteca,

español

, española, descargar, gratis, descargar gratis, mp3, video, mp4, 3gp, jpg, jpeg, gif, png, imagen, música, canción, película, libro, juego, juegos